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 Copyright 2013 Lu Wang &lt;coolwanglu@gmail.com&gt;
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      </para>
      <para>43</para>
      <para>Rev. Fac. Agron. (LUZ). 2021, 38: 43-59. Enero-Marzo.</para>
      <para>DOI: https://doi.org/10.47280/RevFacAgron(LUZ).v38.n1.03 ISSN 2477-9407</para>
      <para>Esta publicación cientíca en formato digital es continuación de la Revista Impresa: Depósito legal pp 196802ZU42, ISSN 0378-7818.</para>
      <para>Recibido el 25-02-2020 . Aceptado el 21-07-2020.</para>
      <para>*Autor de correspondencia. Correo electrónico: alfredo.rodriguez@unicach.mx</para>
      <para>Efecto del ácido salicílico sobre la germinación y </para>
      <para>crecimiento inicial del café (Coffea arabica L. var. </para>
      <para>Costa Rica 95)</para>
      <para>Effect of salicylic acid on the germination and initial </para>
      <para>growth of coffee (Coffea arabica L. var. Costa Rica 95)</para>
      <para>Efeito do ácido salicílico sobre a germinação e crescimento </para>
      <para>inicial do café (Coffea arabica L. var. Costa Rica 95)</para>
      <para>Alder Gordillo Curiel</para>
      <para>1</para>
      <para>, Luis Alfredo Rodríguez Larramendi</para>
      <para>1</para>
      <para>*, </para>
      <para>Miguel Ángel Salas Marina</para>
      <para>1 </para>
      <para>y María de los Ángeles Rosales </para>
      <para>Esquinca</para>
      <para>2</para>
      <para>1</para>
      <para>Universidad de Ciencias y Artes de Chiapas, Ingeniería Agroforestal, </para>
      <para>subsede Villa Corzo. km 3.0 carretera Villa Corzo-Monterrey C.P 30520. </para>
      <para>Correo electrónico: (AG) alder.gordillo@unicach.mx, </para>
      <para>; (LR) alfredo.</para>
      <para>rodriguez@unicach.mx, ; (MS) miguel.salas@unicach.mx, </para>
      <para>; </para>
      <para>2</para>
      <para>Universidad </para>
      <para>Autónoma de Chiapas. Facultad de Ciencias Agronómicas. Campus V. </para>
      <para>Carretera Villaores-Ocozocoautla km 84.5 C.P. 30470. Correo electrónico: </para>
      <para>rosalesm@unach.mx </para>
      <para>.</para>
      <para>Resumen</para>
      <para>El establecimiento de nuevas plantaciones de cafetos requiere plántulas </para>
      <para>vigorosas y sanas que garanticen un buen crecimiento y altos rendimientos; de ahí </para>
      <para>la importancia del estudio del efecto de sustancias bioestimulantes en las fases </para>
      <para>tempranas de la ontogenia del cultivo. En este sentido, se estudió el efecto combinado </para>
      <para>de cinco concentraciones de ácido salicílico (0; 0,0125; 0,025; 0,05; 0,1 y 1 mM) y </para>
      <para>diferentes tiempos de imbibición de las semillas (1, 2, 3 y 4 h), sobre la germinación </para>
      <para>y crecimiento inicial de plántulas de cafetos (Coffea arabica L.) variedad Costa Rica </para>
      <para>95. El diseño experimental fue completamente al azar con un arreglo bifactorial, con </para>
      <para>24 tratamientos y 20 repeticiones. Se evaluó el porcentaje y tasa de germinación, </para>
      <para>altura y diámetro del hipocótilo. Los resultados demostraron que las concentraciones </para>
      <para>(0,0125; 0,025 y 0,05 mM) y tiempos de imbibición de las semillas de 3 y 4 h en ácido </para>
      <para>salicílico promueven una germinación temprana y un efecto positivo en la altura y </para>
      <para>el diámetro del hipocótilo.Los hallazgos obtenidos demuestran que el ácido salicílico </para>
      <para>aplicado en bajas concentraciones puede ser utilizado para acelerar la germinación </para>
      <para/>
    </sect2>
    <sect2 id="pf2">
      <para>44</para>
      <para>Esta publicación cientíca en formato digital es continuación de la Revista Impresa: Depósito legal pp 196802ZU42, ISSN 0378-7818.</para>
      <para>Rev. Fac. Agron. (LUZ). 2021, 38: 43-59. Enero-Marzo.</para>
      <para>Gordillo et al. ISSN 2477-9407</para>
      <para>de semillas de café e inducir el crecimiento inicial de plántulas de cafetos, al tiempo </para>
      <para>que pudiera considerarse como una opción viable para los productores cafetaleros, </para>
      <para>tanto por su fácil aplicación como la inocuidad del producto.</para>
      <para>Palabras clave: ácido salicílico, germinación, crecimiento, café.</para>
      <para>Abstract</para>
      <para>The establishment of new coffee plantations requires vigorous and healthy seedlings </para>
      <para>that guarantee good growth and high yields; hence the importance of studying the </para>
      <para>effect of bio-stimulant substances in the early stages of the crop’s ontogeny. In this </para>
      <para>sense, the combined effect of ve concentrations of salicylic acid (0; 0.0125; 0.025; 0.05; </para>
      <para>0.1 and 1 mM) and different times of imbibition of the seeds (1, 2, 3 and 4 h), on the </para>
      <para>germination and initial growth of coffee plants (Coffea arabica L.) variety Costa Rica </para>
      <para>95 was studied. The experimental design was completely randomized with a bifactorial </para>
      <para>arrangement, with 24 treatments and 20 repetitions. The percentage and germination </para>
      <para>rate, height and diameter of the hypocotyl were evaluated. The results showed that </para>
      <para>the concentrations (0.0125; 0.025 and 0.05 mM) and imbibition times of the seeds of </para>
      <para>3 and 4 h in salicylic acid promoted an early germination and a positive effect on the </para>
      <para>height and diameter of the hypocotyl. The ndings show that salicylic acid applied in </para>
      <para>low concentrations can be used to accelerate the germination of coffee seeds and induce </para>
      <para>the initial growth of coffee plantlets, while it could be considered as a viable option for </para>
      <para>coffee producers, both for its easy application and the safety of the product.</para>
      <para>Keywords: salicylic acid, germination, growth, coffee.</para>
      <para>Resumo</para>
      <para>O estabelecimento de novas plantações de café requer mudas vigorosas e saudáveis </para>
      <para>que garantam um bom crescimento e altos rendimentos; daí a importância de estudar </para>
      <para>o efeito das substâncias bioestimulantes nos estágios iniciais da ontogenia da cultura. </para>
      <para>Neste sentido, foi estudado o efeito combinado de cinco concentrações de ácido salicílico </para>
      <para>(0; 0,0125; 0,025; 0,05; 0,1 e 1 mM) e diferentes tempos de imbibição das sementes </para>
      <para>(1, 2, 3 e 4 h), sobre a germinação e crescimento inicial das mudas de plantas de café </para>
      <para>(Coffea arabica L.) variedade Costa Rica 95. O projeto experimental foi completamente </para>
      <para>randomizado com uma disposição bifatorial, com 24 tratamentos e 20 repetições. A </para>
      <para>porcentagem e a taxa de germinação, altura e diâmetro do hipocótilo foram avaliadas. </para>
      <para>Os resultados mostraram que as concentrações (0,0125; 0,025 e 0,05 mM) e os tempos </para>
      <para>de imbibição das sementes de 3 e 4 h em ácido salicílico promovem uma germinação </para>
      <para>precoce e um efeito positivo sobre a altura e o diâmetro do hipocótilo. Os resultados </para>
      <para>mostram que o ácido salicílico aplicado em baixas concentrações pode ser usado para </para>
      <para>acelerar a germinação dos grãos de café e induzir o crescimento inicial dos pés de café, </para>
      <para>enquanto que poderia ser considerado como uma opção viável para os produtores de </para>
      <para>café, tanto por sua fácil aplicação como pela segurança do produto.</para>
      <para>Palavras-chave: ácido salicílico, germinação, crescimento, café.</para>
    </sect2>
    <sect2 id="pf3">
      <para>45</para>
      <para>Esta publicación cientíca en formato digital es continuación de la Revista Impresa: Depósito legal pp 196802ZU42, ISSN 0378-7818.</para>
      <para>Rev. Fac. Agron. (LUZ). 2021, 38: 43-59. Enero-Marzo.</para>
      <para>Gordillo et al. ISSN 2477-9407</para>
      <para>Introducción</para>
      <para>La introducción de nuevos </para>
      <para>materiales genéticos en las </para>
      <para>plantaciones de café en Chiapas, </para>
      <para>México, ha cobrado importancia </para>
      <para>debido a la necesidad de reemplazar </para>
      <para>variedades susceptibles a la roya </para>
      <para>(Hemileia vastatrix Berk &amp; Br.). El </para>
      <para>ataque de este hongo en el año 2012 </para>
      <para>devastó plantaciones de los cafetales </para>
      <para>de la Sierra Madre de Chiapas en </para>
      <para>México, las cuales sufrieron pérdidas </para>
      <para>del 70 % de la producción (Castiaux et </para>
      <para>al., 2014). </para>
      <para>La obtención de plántulas </para>
      <para>vigorosas es un factor importante en </para>
      <para>la renovación de cafetales, pues ello </para>
      <para>garantiza que las variedades expresen </para>
      <para>su mejor potencial productivo en </para>
      <para>campo (Sadeghian y Zapata, 2015). El </para>
      <para>crecimiento inicial de las plántulas es </para>
      <para>de vital importancia y se requieren de </para>
      <para>muchos cuidados para lograr plantas </para>
      <para>vigorosas, sanas y con buen desarrollo. </para>
      <para>En este sentido, se han realizado </para>
      <para>investigaciones y nuevos aportes </para>
      <para>al conocimiento relacionadas con el </para>
      <para>crecimiento inicial de plántulas de café, </para>
      <para>evaluando desde dosis de fertilización </para>
      <para>mineral, uso de microorganismos </para>
      <para>benécos, reguladores de crecimiento </para>
      <para>como brasinoesteroides, citocininas </para>
      <para>entre otros, con la nalidad de obtener </para>
      <para>plantas vigorosas desde su temprana </para>
      <para>edad (Cruz-Castillo et al., 1999; Utria-</para>
      <para>Borges et al., 2004; Anaya et al., 2011; </para>
      <para>Sadeghian-Khalajabadi y González-</para>
      <para>Osorio, 2014).</para>
      <para>En esta misma línea, el uso de </para>
      <para>compuesto fenólicos ha cobrado </para>
      <para>importancia en los últimos años, </para>
      <para>aunque su aplicación inició en los </para>
      <para>Introduction</para>
      <para>The introduction of new genetic </para>
      <para>materials in coffee plantations </para>
      <para>in Chiapas, Mexico, has become </para>
      <para>important because of the necessity to </para>
      <para>replace varieties susceptible to rust </para>
      <para>(Hemileia vastatrix Berk &amp; Br.). The </para>
      <para>attack of this fungus in 2012 </para>
      <para>devastated coffee plantations in the </para>
      <para>Sierra Madre of Chiapas, which lost </para>
      <para>a 70 % of production (Castiaux et al., </para>
      <para>2014).</para>
      <para>An important factor in the renewal </para>
      <para>of coffee plantations is obtaining </para>
      <para>vigorous seedlings, since this </para>
      <para>guarantees that the varieties express </para>
      <para>their best productive potential in the </para>
      <para>eld (Sadeghian and Zapata, 2015). </para>
      <para>The initial growth of the seedlings has </para>
      <para>a vital importance and require especial </para>
      <para>cares to achieve vigorous, healthy and </para>
      <para>well-developed plants. In this sense, </para>
      <para>research and new contributions to </para>
      <para>knowledge related to the initial growth </para>
      <para>of coffee seedlings have been carried </para>
      <para>out evaluating some aspect such as </para>
      <para>doses of mineral fertilization, the use </para>
      <para>of benecial microorganisms, growth </para>
      <para>regulators brassinosteroids, cytokines, </para>
      <para>etc.; In order to obtain vigorous plants </para>
      <para>from an early age (Cruz-Castillo et al., </para>
      <para>1999; Utria-Borges et al., 2004; Anaya </para>
      <para>et al., 2011; Sadeghian-Khalajabadi </para>
      <para>and González-Osorio, 2014).</para>
      <para>In recent years, the use of phenolic </para>
      <para>compounds has gained importance </para>
      <para>although its application began in the </para>
      <para>1970s. Salicylic acid (AS), or ortho-</para>
      <para>hydroxybenzoic acid, are a phenolic </para>
      <para>compound found in plants (Hayat et </para>
      <para>al., 2013). The rst investigation of </para>
      <para>this compound on the physiology of </para>
    </sect2>
    <sect2 id="pf4">
      <para>46</para>
      <para>Esta publicación cientíca en formato digital es continuación de la Revista Impresa: Depósito legal pp 196802ZU42, ISSN 0378-7818.</para>
      <para>Rev. Fac. Agron. (LUZ). 2021, 38: 43-59. Enero-Marzo.</para>
      <para>Gordillo et al. ISSN 2477-9407</para>
      <para>años setenta. El ácido salicílico (AS) </para>
      <para>o ácido orto-hidroxibenzoico, es un </para>
      <para>compuesto fenólico que se encuentra </para>
      <para>en las plantas (Hayat et al., 2013). El </para>
      <para>primer reporte de una investigación </para>
      <para>de este compuesto sobre la siología </para>
      <para>de las plantas en México, fue sobre </para>
      <para>su efecto en el estatus hídrico de </para>
      <para>plántulas de frijol (Larqué-Saavedra, </para>
      <para>1978). A partir de este hecho se han </para>
      <para>realizado investigaciones sobre el </para>
      <para>AS y su efecto en el crecimiento de </para>
      <para>raíces y en la oración, germinación, </para>
      <para>procesos asociados al estado hídrico de </para>
      <para>las plantas y su relación en el sistema </para>
      <para>de defensa que desarrollan las plantas </para>
      <para>ante la presencia de patógenos </para>
      <para>(Cleland y Tanaka, 1979; Manthe et </para>
      <para>al., 1992; Barskosky y Einhellig, 1993; </para>
      <para>Bandurska y Ski, 2005; Rajjou, 2006; </para>
      <para>Echevarría-Machado et al., 2007; </para>
      <para>Korkmaz et al., 2007; Gharib y Hegazi, </para>
      <para>2010; Nazar et al., 2017; Rodríguez-</para>
      <para>Larramendi et al., 2017).</para>
      <para>No se ha estudiado lo suciente </para>
      <para>sobre el efecto que tiene la aplicación </para>
      <para>del AS en especies cultivadas, en </para>
      <para>comparación con otros reguladores </para>
      <para>de crecimiento. Sin embargo, las </para>
      <para>respuestas de las plantas al efecto </para>
      <para>del AS y particularmente ante </para>
      <para>situaciones de estrés biótico son las </para>
      <para>más abundantes en la literatura </para>
      <para>(Rodríguez-Larramendi et al., 2017).</para>
      <para>Se ha demostrado que el AS puede </para>
      <para>retrasar e inhibir la germinación </para>
      <para>o aumentar el vigor de la semilla. </para>
      <para>Estos resultados contradictorios </para>
      <para>pueden estar relacionados con las </para>
      <para>concentraciones de AS empleadas </para>
      <para>(Hayat et al, 2013). En cebada </para>
      <para>(Hordeum vulgare L.) dosis de </para>
      <para>AS mayores de 0,25 mM de AS </para>
      <para>plants in Mexico was about its effect </para>
      <para>in the water status of bean seedlings </para>
      <para>(Larqué - Saavedra, 1978). From this </para>
      <para>fact, some researches has been realized </para>
      <para>about SA and its effect in growth </para>
      <para>root and owering, germination and </para>
      <para>processes associated with the water </para>
      <para>state of plants and their relationship </para>
      <para>with the defense system that plants </para>
      <para>develop against the presence of </para>
      <para>pathogens (Cleland and Tanaka, </para>
      <para>1979; Manthe et al., 1992; Barskosky </para>
      <para>and Einhellig, 1993; Bandurska and </para>
      <para>Ski, 2005; Rajjou, 2006; Echevarría-</para>
      <para>Machado et al., 2007; Korkmaz et al., </para>
      <para>2007; Gharib and Hegazi, 2010; Nazar </para>
      <para>et al., 2017; Rodríguez-Larramendi et </para>
      <para>al., 2017).</para>
      <para>Not enough has been studied about </para>
      <para>the effect that the application of AS </para>
      <para>has on cultivated species, compared to </para>
      <para>other growth regulators. However, the </para>
      <para>plant responses to the effect of SA and </para>
      <para>particularly to situations of biotic stress </para>
      <para>are the most abundant in the literature </para>
      <para>(Rodríguez-Larramendi et al., 2017).</para>
      <para>Many investigations have been </para>
      <para>shown that the use of AS delay and </para>
      <para>inhibit germination or increase seed </para>
      <para>vigor. These contradictory results </para>
      <para>may be related to the concentrations </para>
      <para>of SA used (Hayat et al., 2013). In </para>
      <para>barley (Hordeum vulgare L.) the </para>
      <para>doses of AS greater than 0.25 mM </para>
      <para>inhibited germination (Xie et al., </para>
      <para>2007), while in Arabidopsis thaliana, </para>
      <para>AS concentrations superior to 1 mM </para>
      <para>delayed and inhibited germination </para>
      <para>(Rajjou, 2006). Similarly, in corn (Zea </para>
      <para>mays L.) a complete inhibition of seed </para>
      <para>germination was observed with doses </para>
      <para>of 3-5 mM AS (Guan and Scandalios, </para>
      <para>1995).</para>
    </sect2>
    <sect2 id="pf5">
      <para>47</para>
      <para>Esta publicación cientíca en formato digital es continuación de la Revista Impresa: Depósito legal pp 196802ZU42, ISSN 0378-7818.</para>
      <para>Rev. Fac. Agron. (LUZ). 2021, 38: 43-59. Enero-Marzo.</para>
      <para>Gordillo et al. ISSN 2477-9407</para>
      <para>In contrast, there are reports of SA </para>
      <para>stimulating effect on seed germination </para>
      <para>and wheat seedlings growth </para>
      <para>(Triticum aestivum L.) treated with </para>
      <para>a concentration of 0.05 mM SA and 3 </para>
      <para>hours of imbibition (Shakirova, 2007). </para>
      <para>Another positive effect on germination </para>
      <para>was observed in bean seeds (Phaseolus </para>
      <para>vulgaris L.) treated with a SA </para>
      <para>concentration of 0.1 mM for 6 hours </para>
      <para>under cold stress conditions. The </para>
      <para>results showed signicant increases </para>
      <para>in the germination percentage and the </para>
      <para>germination rate (Gharib and Hegazi, </para>
      <para>2010). In this same crop, Rodríguez-</para>
      <para>Larramendi et al. (2017) evaluated </para>
      <para>the effect of different imbibition </para>
      <para>times and SA concentrations, nding </para>
      <para>that seed imbibition for 1 and 2 h, in </para>
      <para>concentrations of 0.01 and 0.025 mM, </para>
      <para>stimulated germination and initial </para>
      <para>growth of seedlings.</para>
      <para>According to the background </para>
      <para>shown and the importance of coffee </para>
      <para>cultivation for the Frailesca region </para>
      <para>of Chiapas in Mexico; The present </para>
      <para>investigation was carried out with the </para>
      <para>aim of studying the effect of salicylic </para>
      <para>acid on several concentrations and </para>
      <para>imbibition times in the germination </para>
      <para>and initial growth of Coffea arabica </para>
      <para>(L.) variety Costa Rica 95.</para>
      <para>Materials and methods</para>
      <para>Location</para>
      <para>A rustic greenhouse of 50 m</para>
      <para>2</para>
      <para>with a </para>
      <para>black polyethylene mesh that allowed </para>
      <para>50 % of shade was established, in </para>
      <para>the experimental area of Villa Corzo </para>
      <para>headquarters on the Facultad de </para>
      <para>Ingeniería de la Universidad de </para>
      <para>Ciencias y Artes de Chiapas en Villa </para>
      <para>inhibieron la germinación (Xie et al., </para>
      <para>2007), mientras que en Arabidopsis </para>
      <para>thaliana, concentraciones superiores </para>
      <para>a 1 mM de AS retrasaron e inhibieron </para>
      <para>la germinación (Rajjou, 2006). De </para>
      <para>igual manera en maíz (Zea mays L.) se </para>
      <para>observó una completa inhibición de la </para>
      <para>germinación de las semillas con dosis </para>
      <para>de 3-5 mM de AS (Guan y Scandalios, </para>
      <para>1995).</para>
      <para>En contraparte, existen reportes </para>
      <para>del efecto estimulante del AS en </para>
      <para>la germinación de semillas y el </para>
      <para>crecimiento de plántulas de trigo </para>
      <para>(Triticum aestivum L.) tratadas con </para>
      <para>una concentración de 0,05 mM de AS </para>
      <para>y 3 horas de imbibición (Shakirova, </para>
      <para>2007). Otro efecto positivo en la </para>
      <para>germinación, se observó en semillas de </para>
      <para>frijol (Phaseolus vulgaris L.) tratadas </para>
      <para>con una concentración de AS de 0,1 </para>
      <para>mM durante 6 horas en condiciones </para>
      <para>de estrés por frío. Los resultados </para>
      <para>mostraron incrementos signicativos </para>
      <para>en el porcentaje de germinación y </para>
      <para>la tasa de germinación (Gharib y </para>
      <para>Hegazi, 2010). En este mismo cultivo, </para>
      <para>Rodríguez-Larramendi et al. (2017) </para>
      <para>evaluaron el efecto de diferentes </para>
      <para>concentraciones y diferentes tiempos </para>
      <para>de imbibición en AS, encontrando </para>
      <para>que la imbibición de semillas durante </para>
      <para>1 y 2 h, a concentraciones de 0,01 y </para>
      <para>0,025 mM estimuló la germinación y </para>
      <para>el crecimiento inicial de las plántulas.</para>
      <para>De acuerdo con los antecedentes </para>
      <para>mostrados y la importancia que reviste </para>
      <para>el cultivo del cafeto para la región </para>
      <para>Frailesca de Chiapas en México; se </para>
      <para>realizó la presente investigación </para>
      <para>con el objetivo de estudiar el efecto </para>
      <para>de concentraciones y tiempos de </para>
      <para>imbibición de ácido salicílico sobre la </para>
    </sect2>
    <sect2 id="pf6">
      <para>48</para>
      <para>Esta publicación cientíca en formato digital es continuación de la Revista Impresa: Depósito legal pp 196802ZU42, ISSN 0378-7818.</para>
      <para>Rev. Fac. Agron. (LUZ). 2021, 38: 43-59. Enero-Marzo.</para>
      <para>Gordillo et al. ISSN 2477-9407</para>
      <para>germinación y crecimiento inicial de </para>
      <para>Coffea arabica (L.) variedad Costa </para>
      <para>Rica 95.</para>
      <para>Materiales y métodos</para>
      <para>Localización</para>
      <para>Se estableció un invernadero </para>
      <para>rústico de 50 m</para>
      <para>2</para>
      <para>, con una malla de </para>
      <para>polietileno color negra que permitió 50 </para>
      <para>% de sombra, en el área experimental </para>
      <para>de la sede Villa Corzo, de la Facultad </para>
      <para>de Ingeniería de la Universidad de </para>
      <para>Ciencias y Artes de Chiapas en Villa </para>
      <para>Corzo, Chiapas, México, ubicada a los </para>
      <para>16°09’45,6” N, 93°16’40,3” O, a 600 </para>
      <para>msnm. </para>
      <para>Material vegetal</para>
      <para>Se utilizaron semillas de café (C. </para>
      <para>arabica) de la variedad Costa Rica 95, </para>
      <para>resistente a roya, provenientes de un </para>
      <para>distribuidor de la región, con un 95 % </para>
      <para>de pureza. </para>
      <para>Diseño experimental</para>
      <para>Se diseñó un experimento </para>
      <para>completamente al azar con arreglo </para>
      <para>factorial, con 24 tratamientos </para>
      <para>y 20 repeticiones. El factor A </para>
      <para>estuvo compuesto por seis niveles, </para>
      <para>correspondiente a las concentraciones </para>
      <para>de ácido salicílico (0; 0,0125; 0,025; </para>
      <para>0,05; 0,1 y 1 mM), y un testigo en </para>
      <para>agua destilada considerado como 0 </para>
      <para>mM). El factor B, con cuatro niveles, lo </para>
      <para>conformaron los tiempos de imbibición </para>
      <para>de las semillas en ácido salicílico (1, 2, </para>
      <para>3, 4 horas). </para>
      <para>Concentraciones de ácido </para>
      <para>salicílico</para>
      <para>La preparación de las concentraciones </para>
      <para>de AS se realizó tomando como </para>
      <para>referencia su masa molar. A partir de </para>
      <para>una solución madre de 1 M, se realizaron </para>
      <para>Corzo, Chiapas, located at 16 ° 09’45.6” </para>
      <para>N, 93 ° 16’40.3” W, 600 meters above </para>
      <para>sea level.</para>
      <para>Vegetal material</para>
      <para>Coffee seeds (C. arabica) of Costa </para>
      <para>Rica 95 variety were used, which are </para>
      <para>resistant to rust and have a 95 % of </para>
      <para>purity from a distributor in the region.</para>
      <para>Experimental design</para>
      <para>A randomized experiment with a </para>
      <para>factorial arrangement was designed </para>
      <para>integrated for 24 treatments and </para>
      <para>20 repetitions. The A factor was </para>
      <para>composed of six levels, corresponding </para>
      <para>to the concentrations of salicylic acid </para>
      <para>(0; 0.0125; 0.025; 0.05; 0.1 and 1 </para>
      <para>mM) and a control in distilled water </para>
      <para>considered as 0 Mm. The B factor, with </para>
      <para>four levels, formed by the imbibition </para>
      <para>times of the seeds in salicylic acid (1, </para>
      <para>2, 3, 4 hours).</para>
      <para>Salicylic acid concentrations</para>
      <para>The AS concentrations was </para>
      <para>prepared with their molar mass as </para>
      <para>reference. From a 1 M of stock solution, </para>
      <para>the respective dilutions were realized </para>
      <para>to ve concentrations (0.0125; 0.025; </para>
      <para>0.05; 0.1 and 1mM). Subsequently, 20 </para>
      <para>seeds without parchment (endocarp) </para>
      <para>were placed into the 50 mL beakers, </para>
      <para>with 40 mL of each solution. The </para>
      <para>control was imbibed in distilled water </para>
      <para>with the same volume and were left </para>
      <para>in each solution according to the </para>
      <para>imbibition times studied (1, 2, 3 and 4 </para>
      <para>h). Then, the seeds were removed and </para>
      <para>left on lter paper for 15 minutes at </para>
      <para>room temperature to remove excess </para>
      <para>SA and sow them. The sowing was </para>
      <para>carried out in plastic trays with 64 </para>
      <para>alveoli on a substrate composed of 85 </para>
      <para>% Peat Moss (Sphagnum moss) and 15 </para>
      <para>% pumice.</para>
    </sect2>
    <sect2 id="pf7">
      <para>49</para>
      <para>Esta publicación cientíca en formato digital es continuación de la Revista Impresa: Depósito legal pp 196802ZU42, ISSN 0378-7818.</para>
      <para>Rev. Fac. Agron. (LUZ). 2021, 38: 43-59. Enero-Marzo.</para>
      <para>Gordillo et al. ISSN 2477-9407</para>
      <para>las respectivas diluciones hasta lograr </para>
      <para>las cinco concentraciones (0,0125; 0,025; </para>
      <para>0,05; 0,1 y 1 mM). Posteriormente, se </para>
      <para>colocaron 20 semillas sin pergamino </para>
      <para>(endocarpio) en vasos de precipitados </para>
      <para>de 50 mL, con 40 mL de cada solución. </para>
      <para>El testigo se embebió en agua destilada </para>
      <para>con el mismo volumen y se dejaron en </para>
      <para>cada solución de acuerdo a los tiempos </para>
      <para>de imbibición estudiados (1, 2, 3 y 4 h). </para>
      <para>Seguidamente, se sacaron las semillas </para>
      <para>y se dejaron en papel ltro por 15 </para>
      <para>minutos a temperatura ambiente para </para>
      <para>eliminar el exceso de AS y sembrarlas </para>
      <para>inmediatamente. La siembra se realizó </para>
      <para>en charolas de plástico de 64 alveolos </para>
      <para>sobre un sustrato compuesto por un 85 </para>
      <para>% de Peat Moss (musgo Sphagnum) y </para>
      <para>15 % de piedra pómez (pumita).</para>
      <para>Una vez sembradas las semillas, se </para>
      <para>hicieron riegos diarios con 80 mL de </para>
      <para>agua destilada por alveolo. La siembra </para>
      <para>se realizó el 01 de febrero del 2018.</para>
      <para>Variables y muestreos</para>
      <para>Al inicio de la germinación (32 días </para>
      <para>después de la siembra) se contaron las </para>
      <para>semillas germinadas por tratamientos </para>
      <para>cada dos días y se calculó el porcentaje </para>
      <para>de germinación (PG) y la tasa de </para>
      <para>germinación (TG) (días), con la fórmula </para>
      <para>TG=(∑</para>
      <para>nt</para>
      <para>)/(∑</para>
      <para>n</para>
      <para>), donde n es el número de </para>
      <para>semillas germinadas en el tiempo, t es </para>
      <para>el número de días transcurridos para </para>
      <para>la germinación (Matthews y Khajeh-</para>
      <para>Hosseini, 2007), además con los registros </para>
      <para>de los porcentajes de germinación, se </para>
      <para>analizó la dinámica de germinación </para>
      <para>por efecto de los tratamientos de AS </para>
      <para>aplicados.</para>
      <para>A partir de la aparición de las hojas </para>
      <para>cotiledonales (fase de mariposa), a todas </para>
      <para>las plántulas de cada tratamiento, se les </para>
      <para>midió el diámetro (mm) en la base del </para>
      <para>Once the seeds were sown, they </para>
      <para>were irrigated daily with 80 mL of </para>
      <para>water distilled by alveolus. The sowing </para>
      <para>was done on February 1, 2018. </para>
      <para>Variables and samples</para>
      <para>At the beginning of germination </para>
      <para>(32 days after sowing) the seeds </para>
      <para>germinated by treatments were </para>
      <para>counted every two days. The </para>
      <para>percentage of germination (PG) and </para>
      <para>the germination rate (TG) (days) </para>
      <para>were calculated, with the formula TG </para>
      <para>= (∑</para>
      <para>nt</para>
      <para>) / (∑</para>
      <para>n</para>
      <para>), where n is the number </para>
      <para>of seeds germinated over time, t </para>
      <para>is the number of days elapsed for </para>
      <para>germination (Matthews and Khajeh-</para>
      <para>Hosseini, 2007). In addition to record </para>
      <para>the percentages of germination, </para>
      <para>the germination dynamics were </para>
      <para>analyzed by the effect of the AS </para>
      <para>treatments applied.</para>
      <para>From the appearance of the </para>
      <para>cotyledonal leaves (buttery phase), </para>
      <para>for all the seedlings of each treatment, </para>
      <para>the diameter (mm) at the base of </para>
      <para>the hypocotyl was measured with a </para>
      <para>Vernier (Pretul Calibrator VER-6P) </para>
      <para>and the height of the hypocotyl from </para>
      <para>the neck to the insertion point of the </para>
      <para>cotyledonal leaves, with a ruler.</para>
      <para>Statistical analysis</para>
      <para>The data were processed through </para>
      <para>a bifactorial analysis of variance, </para>
      <para>after comparing the homogeneity </para>
      <para>of variances through the Bartlett </para>
      <para>test (Snedecor and Cochran, 1989). </para>
      <para>The comparison of means was </para>
      <para>performed through the Minimum </para>
      <para>Signicant Difference test (MSD) </para>
      <para>for a probability error of p≤0.05. </para>
      <para>The analyzes were executed with </para>
      <para>Statistica 8.0 software (StatSoft, </para>
      <para>2008).</para>
    </sect2>
    <sect2 id="pf8">
      <para>50</para>
      <para>Esta publicación cientíca en formato digital es continuación de la Revista Impresa: Depósito legal pp 196802ZU42, ISSN 0378-7818.</para>
      <para>Rev. Fac. Agron. (LUZ). 2021, 38: 43-59. Enero-Marzo.</para>
      <para>Gordillo et al. ISSN 2477-9407</para>
      <para>hipocótilo con un Vernier (Calibrador </para>
      <para>Pretul VER-6P) y la altura del </para>
      <para>hipocótilo desde el cuello hasta el punto </para>
      <para>de inserción de las hojas cotiledonales, </para>
      <para>con una regla milimetrada. </para>
      <para>Análisis estadístico</para>
      <para>Los datos se procesaron a través </para>
      <para>de un análisis de varianza bifactorial, </para>
      <para>previa comparación de la homogeneidad </para>
      <para>de varianzas a través de la prueba de </para>
      <para>Bartlett (Snedecor y Cochran, 1989). </para>
      <para>La comparación de medias se realizó </para>
      <para>a través de la prueba de la Mínima </para>
      <para>Diferencia Signicativa (MDS) para </para>
      <para>una probabilidad de error p≤0,05. Los </para>
      <para>análisis se realizaron con el software </para>
      <para>Statistica 8.0 (StatSoft, 2008).</para>
      <para>Resultados y discusión</para>
      <para>Porcentaje de germinación </para>
      <para>No se observaron diferencias </para>
      <para>estadísticas signicativas entre las </para>
      <para>interacciones de las concentraciones y </para>
      <para>tiempos de imbibición del AS sobre la </para>
      <para>germinación (p=0,63) (gura 1), pero si </para>
      <para>hubo diferencias signicativas (</para>
      <para>p=0,00) </para>
      <para>dentro de los factores individuales </para>
      <para>(gura 2).</para>
      <para>El mayor porcentaje de germinación </para>
      <para>(31,25 %) se registró en el tratamiento </para>
      <para>con AS a una concentración de 0,0125 </para>
      <para>mM, siendo estadísticamente diferente </para>
      <para>que el testigo sin AS (17,5 %). Los </para>
      <para>tratamientos con una concentración de </para>
      <para>0,025 mM y 0,05 mM de AS tuvieron </para>
      <para>una germinación de 22,5 % </para>
      <para>y 25 %, </para>
      <para>respectivamente, siendo iguales </para>
      <para>estadísticamente al tratamiento </para>
      <para>testigo (gura 2A), mientras que las </para>
      <para>concentraciones de AS de 0,1 mM y 1 </para>
      <para>Mm mostraron un efecto inhibitorio al </para>
      <para>inicio de la germinación.</para>
      <para>Results and discussion</para>
      <para>Germination percentage</para>
      <para>There weren’t observe signicant </para>
      <para>statistical differences between the </para>
      <para>interactions of SA concentrations and </para>
      <para>imbibition times on germination (p= </para>
      <para>0.63) (gure 1). However, were showed </para>
      <para>signicant differences (p= 0.00) within </para>
      <para>the individual factors. (gure 2). </para>
      <para>The highest germination </para>
      <para>percentage (31.25 %) was registered </para>
      <para>in the treatment with SA at a </para>
      <para>concentration of 0.0125 mM, being </para>
      <para>statistically different from the control </para>
      <para>without AS (17.5 %). The treatments </para>
      <para>with a concentration of 0.025 mM and </para>
      <para>0.05 mM of AS had a germination of </para>
      <para>22.5 % and 25 %, respectively, being </para>
      <para>statistically equal to the control </para>
      <para>treatment (gure 2A), while the </para>
      <para>concentrations of AS of 0.1 mM and 1 </para>
      <para>Mm showed an inhibitory effect at the </para>
      <para>beginning of germination.</para>
      <para>Regarding the imbibition times, </para>
      <para>the seeds submerged for 4 h in AS had </para>
      <para>the highest germination percentage </para>
      <para>(25 %), being statistically the same </para>
      <para>as the treatment at 3 h of imbibition </para>
      <para>(20.8 %). Treatments with 1 and 2 </para>
      <para>hours of AS imbibition presented the </para>
      <para>lowest germination percentages (9 % </para>
      <para>and 13 %) (gure 2B).</para>
      <para>These results corroborate that AS </para>
      <para>inuences the germination of coffee </para>
      <para>tree seeds and this effect depends </para>
      <para>on the concentration and the time of </para>
      <para>exposure of the seeds to this substance. </para>
      <para>In this regard, there are reports that </para>
      <para>indicate that AS also has an inhibitory </para>
      <para>effect, depending on the concentration </para>
      <para>and the plant species. For example, </para>
      <para>germination was inhibited in barley </para>
    </sect2>
    <sect2 id="pf9">
      <para>
        <inlinegraphic fileref="embedded:Image2" width="4.9236inch" depth="5.1665inch"/>
      </para>
      <para>51</para>
      <para>Esta publicación cientíca en formato digital es continuación de la Revista Impresa: Depósito legal pp 196802ZU42, ISSN 0378-7818.</para>
      <para>Rev. Fac. Agron. (LUZ). 2021, 38: 43-59. Enero-Marzo.</para>
      <para>Gordillo et al. ISSN 2477-9407</para>
      <para>Figura 1. Efecto de las concentraciones y tiempos de imbibición de ácido salicílico </para>
      <para>sobre el porcentaje de germinación de semillas de Coffea arabica L. var. </para>
      <para>Costa Rica 95 a 32 días después de la siembra.</para>
      <para>Figure 1. Concentrations and imbibition times effect of AS on the germination </para>
      <para>percentage of Coffea arabica L. var. Costa Rica 95 at 32 days after sowing.</para>
      <para>Figura 2. Efecto de las concentraciones (A) y tiempos de imbibición de ácido salicílico </para>
      <para>(B) sobre el porcentaje de germinación de semillas de Coffea arabica (L.) var </para>
      <para>Costa Rica 95. </para>
      <para>Figure 2. Concentrations (A) and imbibition times (B) effect of salicylic acid on the </para>
      <para>percentage of germination seeds of Coffea arabica (L.) var Costa Rica 95.</para>
    </sect2>
    <sect2 id="pfa">
      <para>52</para>
      <para>Esta publicación cientíca en formato digital es continuación de la Revista Impresa: Depósito legal pp 196802ZU42, ISSN 0378-7818.</para>
      <para>Rev. Fac. Agron. (LUZ). 2021, 38: 43-59. Enero-Marzo.</para>
      <para>Gordillo et al. ISSN 2477-9407</para>
      <para>En cuanto a los tiempos de </para>
      <para>imbibición, las semillas sumergidas </para>
      <para>durante 4 h en AS presentaron el </para>
      <para>mayor porcentaje de germinación (25 </para>
      <para>%) siendo igual estadísticamente que </para>
      <para>el tratamiento a 3 h de imbibición (20,8 </para>
      <para>%). Los tratamientos con 1 y 2 horas </para>
      <para>de imbibición de AS presentaron los </para>
      <para>menores porcentajes de germinación </para>
      <para>(9 % y 13 %) (gura 2B). </para>
      <para>Estos resultados corroboran que </para>
      <para>el AS inuye en la germinación de </para>
      <para>semillas de cafetos y este efecto </para>
      <para>depende de la concentración y del </para>
      <para>tiempo de exposición de las semillas </para>
      <para>a esta sustancia. Al respecto, existen </para>
      <para>reportes que indican que el AS </para>
      <para>también tiene un efecto inhibitorio, </para>
      <para>en dependencia de la concentración </para>
      <para>y la especie vegetal. Por ejemplo, en </para>
      <para>semillas de cebada (Hordeum vulgare </para>
      <para>L.) tratadas con concentraciones </para>
      <para>de AS mayores de 0,25 mM se </para>
      <para>inhibió la germinación. Se demostró </para>
      <para>que el AS inhibió la inducción de </para>
      <para>giberelina en la producción de las </para>
      <para>α-amilasas en las células de aleurona </para>
      <para>de cebada (Xie et al., 2007). En un </para>
      <para>estudio con seis variedades de frijol </para>
      <para>(Phaseolus vulgaris L.) sometidas </para>
      <para>a una temperatura de 15 °C, la </para>
      <para>aplicación de concentraciones de AS </para>
      <para>de 0,1 mM incrementó el porcentaje de </para>
      <para>germinación al menos en una variedad. </para>
      <para>Además, se registró un incremento de </para>
      <para>la relación del ácido giberélico (GA</para>
      <para>3</para>
      <para>) y </para>
      <para>ácido abscísico (ABA). Este equilibrio </para>
      <para>entre las cantidades relativas de GA</para>
      <para>3</para>
      <para>y ABA endógenas en las semillas y </para>
      <para>la sensibilidad de sus tejidos a estas </para>
      <para>hormonas regularon la germinación de </para>
      <para>las semillas (Gharib y Hegazi, 2010), </para>
      <para>de ahí que se establece que durante la </para>
      <para>seeds (Hordeum vulgare L.) treated </para>
      <para>with AS concentrations greater </para>
      <para>than 0.25 mM. AS showed to inhibit </para>
      <para>the induction of gibberellin in the </para>
      <para>production of α-amylases in barley </para>
      <para>aleurone cells (Xie et al., 2007). In </para>
      <para>a study, with six bean varieties </para>
      <para>(Phaseolus vulgaris L.) subjected to a </para>
      <para>temperature of 15 °C, the application </para>
      <para>of concentrations of AS of 0.1 mM </para>
      <para>increased the germination percentage </para>
      <para>in at least one variety. In addition, </para>
      <para>an increase in the ratio of gibberellic </para>
      <para>acid (GA</para>
      <para>3</para>
      <para>) and abscisic acid (ABA) </para>
      <para>was recorded. This balance between </para>
      <para>the relative amounts of endogenous </para>
      <para>GA</para>
      <para>3</para>
      <para>and ABA in the seeds and the </para>
      <para>sensitivity of their tissues to these </para>
      <para>hormones regulated the germination </para>
      <para>of the seeds (Gharib and Hegazi, </para>
      <para>2010), hence it is established that </para>
      <para>during the early stage of development </para>
      <para>of seedlings a complex interaction </para>
      <para>between AS, ABA and GA</para>
      <para>3</para>
      <para>determines </para>
      <para>the result of germination (Rivas-San </para>
      <para>Vicente and Plasencia, 2011).</para>
      <para>In an experiment with cucumber </para>
      <para>seeds (Cucumis sativus L.) treated </para>
      <para>with AS at concentrations of 0.01; </para>
      <para>0.05; 0.1 and 0.5 mM, with and </para>
      <para>without nitrogen nutrition, the results </para>
      <para>showed that the 0.5 mM concentration </para>
      <para>obtained the highest percentage </para>
      <para>of germination, being better in the </para>
      <para>absence of nitrogen (Singh et al., </para>
      <para>2010).</para>
      <para>AS has shown to induce various </para>
      <para>responses depending on the applied </para>
      <para>concentration and fairly high </para>
      <para>concentrations that are required to </para>
      <para>observe the effects (Métraux et al., </para>
      <para>1990). In all cases, the rst observed </para>
      <para>effect was a delay in seed germination </para>
    </sect2>
    <sect2 id="pfb">
      <para>53</para>
      <para>Esta publicación cientíca en formato digital es continuación de la Revista Impresa: Depósito legal pp 196802ZU42, ISSN 0378-7818.</para>
      <para>Rev. Fac. Agron. (LUZ). 2021, 38: 43-59. Enero-Marzo.</para>
      <para>Gordillo et al. ISSN 2477-9407</para>
      <para>etapa temprana de desarrollo de las </para>
      <para>plántulas una interacción compleja </para>
      <para>entre AS, ABA y GA</para>
      <para>3</para>
      <para>determina el </para>
      <para>resultado de la germinación (Rivas-</para>
      <para>San Vicente y Plasencia, 2011).</para>
      <para>En un experimento con semillas </para>
      <para>de pepino (Cucumis sativus L.) </para>
      <para>tratadas con AS a concentraciones </para>
      <para>de 0,01; 0,05; 0,1 y 0,5 mM, con y sin </para>
      <para>nutrición nitrogenada, los resultados </para>
      <para>demostraron que la concentración 0,5 </para>
      <para>mM obtuvo el más alto porcentaje de </para>
      <para>germinación, siendo mejor en ausencia </para>
      <para>de nitrógeno (Singh et al., 2010).</para>
      <para>Se ha demostrado que el AS induce </para>
      <para>varias respuestas dependiendo de la </para>
      <para>concentración aplicada y se requieren </para>
      <para>concentraciones bastante altas para </para>
      <para>observar los efectos (Métraux et al., </para>
      <para>1990). En todos los casos, el primer </para>
      <para>efecto observado fue un retraso en la </para>
      <para>germinación de la semilla por encima </para>
      <para>de una concentración de 1 mM y el </para>
      <para>proceso de germinación de la semilla </para>
      <para>se afectó signicativamente (Rajjou, </para>
      <para>2006). Se han reportado resultados </para>
      <para>similares para la germinación de </para>
      <para>embriones de maíz (Zea mays L.), </para>
      <para>para los cuales altas dosis de AS, </para>
      <para>en el rango de 3 a 5 mM, inhibieron </para>
      <para>completamente la germinación (Guan </para>
      <para>y Scandalios, 1995). Sin embargo, </para>
      <para>se observa que, a concentraciones </para>
      <para>inferiores a 1 mM, el AS no afectó la </para>
      <para>velocidad, homogeneidad y el grado </para>
      <para>nal de germinación de Arabidopsis. </para>
      <para>Por encima de una concentración de </para>
      <para>0,5 mM, este compuesto implicaba </para>
      <para>un fuerte retraso del crecimiento y </para>
      <para>las plantas parecían blanqueadas, </para>
      <para>presumiblemente porque a altas </para>
      <para>concentraciones el AS indujo un estrés </para>
      <para>oxidativo (Rao et al., 1997).</para>
      <para>above a concentration of 1 mM and </para>
      <para>the seed germination process was </para>
      <para>signicantly affected (Rajjou, 2006). </para>
      <para>Similar results have been reported for </para>
      <para>the germination of corn embryos (Zea </para>
      <para>mays L.), for which high doses of AS, </para>
      <para>in the range of 3 to 5 mM, completely </para>
      <para>inhibited germination (Guan and </para>
      <para>Scandalios, 1995). However, the AS </para>
      <para>did not affect the speed, homogeneity </para>
      <para>and the nal degree of germination of </para>
      <para>Arabidopsis at concentrations below </para>
      <para>1 mM. Above a concentration of 0.5 </para>
      <para>mM, this compound involved strong </para>
      <para>growth retardation and the plants </para>
      <para>appeared bleached because at high </para>
      <para>concentrations AS induced oxidative </para>
      <para>stress (Rao et al., 1997).</para>
      <para>Rajjou (2006), found that during </para>
      <para>the rst eight hours of imbibition of </para>
      <para>AS at concentrations of 0.1; 0.25; 0.5; </para>
      <para>0.75; one; 2.5 and 5 mM in Arabidopsis </para>
      <para>seeds, increased de novo synthesis of </para>
      <para>proteins normally accumulated during </para>
      <para>seed maturation and which are under </para>
      <para>ABA control .That explains, the delay </para>
      <para>in the germination of Arabidopsis </para>
      <para>seeds observed in the presence </para>
      <para>from AS and this coincides with the </para>
      <para>inhibitory effect on the germination of </para>
      <para>coffee seeds caused by the treatment </para>
      <para>with 1 mM found in this investigation.</para>
      <para>Germination rate</para>
      <para>The best seed germination rate </para>
      <para>was recorded in the AS concentration </para>
      <para>of 0.0125 Mm at 35.4 days and reached </para>
      <para>77.5 % of germination, compared to the </para>
      <para>control, which had an average value </para>
      <para>of 39 days with a 67.5 % germination </para>
      <para>percentage (gure 3A).</para>
      <para>Germination percentage dynamics</para>
      <para>Between 32 and 42 days more </para>
      <para>than 80% of germination was reached, </para>
    </sect2>
    <sect2 id="pfc">
      <para>54</para>
      <para>Esta publicación cientíca en formato digital es continuación de la Revista Impresa: Depósito legal pp 196802ZU42, ISSN 0378-7818.</para>
      <para>Rev. Fac. Agron. (LUZ). 2021, 38: 43-59. Enero-Marzo.</para>
      <para>Gordillo et al. ISSN 2477-9407</para>
      <para>Por su parte, Rajjou (2006), encontró </para>
      <para>que durante las primeras ocho horas </para>
      <para>de imbibición de AS a concentraciones </para>
      <para>de 0,1; 0,25; 0,5; 0,75; 1; 2,5 y 5 mM </para>
      <para>en semillas de Arabidopsis, aumentó </para>
      <para>la síntesis de novo de las proteínas </para>
      <para>normalmente acumuladas durante la </para>
      <para>maduración de la semilla y que están </para>
      <para>bajo control de ABA, lo que explicaría </para>
      <para>el retraso en la germinación de </para>
      <para>semillas de Arabidopsis observado en </para>
      <para>presencia de AS; esto coincide con el </para>
      <para>efecto inhibitorio sobre la germinación </para>
      <para>de semillas de café provocado por el </para>
      <para>tratamiento con 1 mM encontrado en </para>
      <para>esta investigación.</para>
      <para>Tasa de germinación</para>
      <para>La mejor tasa de germinación de </para>
      <para>semillas se registró en la concentración </para>
      <para>de 0,0125 mM de AS a los 35,4 días y </para>
      <para>alcanzó el 77,5 % de germinación, en </para>
      <para>comparación con el testigo, en el cual </para>
      <para>se observó un valor promedio de 39 </para>
      <para>días con un porcentaje de 67,5 % de </para>
      <para>germinación (gura 3A).</para>
      <para>Dinámica del porcentaje de </para>
      <para>germinación</para>
      <para>Entre los 32 y 42 días se alcanzó </para>
      <para>más del 80 % de germinación, </para>
      <para>después de ese lapso de tiempo los </para>
      <para>tratamientos no mostraron diferencias </para>
      <para>signicativas (gura 3B), en este </para>
      <para>periodo los tratamientos 0,0125; </para>
      <para>0,025; y 0,05 mM fueron mejores (22 - </para>
      <para>81 %) que el testigo (17 - 75 %). Entre </para>
      <para>los 36 y 42 días, todos los tratamientos </para>
      <para>con AS tuvieron valores más altos </para>
      <para>(66 - 87 %) que el testigo (53 - 75 </para>
      <para>%), rearmando el rol estimulador </para>
      <para>que tienen estas concentraciones </para>
      <para>en la germinación de las semillas </para>
      <para>de cafetos. El efecto positivo del AS </para>
      <para>en la germinación depende, entre </para>
      <para>after that time the treatments did not </para>
      <para>show signicant differences (gure </para>
      <para>3B), in this period the treatments </para>
      <para>0.0125; 0.025; and 0.05 mM were </para>
      <para>better (22 – 81 %) than the control </para>
      <para>(17 – 75 %). Between 36 and 42 days, </para>
      <para>all AS treatments had higher values </para>
      <para>(66 – 87 %) than the control (53 - 75 </para>
      <para>%), reafrming the stimulating role </para>
      <para>that these concentrations have in the </para>
      <para>germination of coffee tree seeds. The </para>
      <para>positive effect of AS on germination </para>
      <para>depends, among other factors, on the </para>
      <para>species and the applied concentration. </para>
      <para>The bean seeds (Phaseolus vulgaris </para>
      <para>L.), treated with AS, presented a </para>
      <para>higher percentage of germination in </para>
      <para>concentrations of 0.01 mM at one hour </para>
      <para>(95.8 %) and three hours of imbibition </para>
      <para>(85 %), but an inhibitory effect on </para>
      <para>germination was observed with </para>
      <para>concentrations of 0.05 mM and 0.1 </para>
      <para>mM when they had higher exposure </para>
      <para>of the AS (from 2 to 4 h) (Rodríguez-</para>
      <para>Larramendi et al., 2017). On the </para>
      <para>other hand, in dill seeds (Anethum </para>
      <para>graveolens L.) treated with AS (100 </para>
      <para>mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>), the increase in germination </para>
      <para>percentage was of 12% compared to </para>
      <para>seeds without AS (Espanany and </para>
      <para>Fallah, 2016 ).</para>
      <para>Hypocotyl length and diameter</para>
      <para>At the time of measurement, all </para>
      <para>seedlings of all treatments presented </para>
      <para>a normal appearance. A signicant </para>
      <para>effect of the concentration factor of </para>
      <para>the AS on the length and diameter </para>
      <para>of the hypocotyl was observed, but </para>
      <para>not between the interaction of the </para>
      <para>concentration and the immersion time </para>
      <para>of the AS. The concentrations 0.0125 </para>
      <para>and 0.025 mM were better, forming </para>
      <para>longer hypocotyls, between 3 and 5 </para>
    </sect2>
    <sect2 id="pfd">
      <para>
        <inlinegraphic fileref="embedded:Image3" width="4.8472inch" depth="1.7291inch"/>
      </para>
      <para>55</para>
      <para>Esta publicación cientíca en formato digital es continuación de la Revista Impresa: Depósito legal pp 196802ZU42, ISSN 0378-7818.</para>
      <para>Rev. Fac. Agron. (LUZ). 2021, 38: 43-59. Enero-Marzo.</para>
      <para>Gordillo et al. ISSN 2477-9407</para>
      <para>Figura 3. Porcentaje de germinación (G) y tasa germinación (TG) a los 32 dds (A), </para>
      <para>dinámica del porcentaje de germinación (B) de semillas de Coffea arabica L. </para>
      <para>var. Costa Rica 95 embebidas en ácido salicílico. </para>
      <para>Figure 3. Germination percentage (G) and germination rate (TG) at 32 dds (A), </para>
      <para>dynamics of the germination percentage (B) of Coffea arabica L. var. Costa </para>
      <para>Rica 95 soaked in salicylic acid.</para>
      <para>otros factores, de la especie y la </para>
      <para>concentración aplicada. En semillas de </para>
      <para>frijol (Phaseolus vulgaris L.), tratadas </para>
      <para>con AS, se observó mayor porcentaje </para>
      <para>de germinación en concentraciones </para>
      <para>de 0,01 mM a una hora (95,8 %) y </para>
      <para>tres horas de imbibición (85 %), pero </para>
      <para>se observó un efecto inhibitorio en la </para>
      <para>germinación con las concentraciones </para>
      <para>0,05 mM y 0,1 mM cuando tuvieron </para>
      <para>mayor exposición del AS (de 2 a 4 h) </para>
      <para>(Rodríguez-Larramendi et al., 2017). </para>
      <para>Por su parte, en semillas de eneldo </para>
      <para>(Anethum graveolens L.) tratadas con </para>
      <para>AS (100 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>), se observó un aumento </para>
      <para>en el porcentaje de germinación en 12 </para>
      <para>% comparadas con las semillas sin AS </para>
      <para>(Espanany y Fallah, 2016).</para>
      <para>mm more compared to the control. </para>
      <para>The concentration of 1 mM caused </para>
      <para>shorter hypocotyls (42 mm), as did the </para>
      <para>control. The diameter of the hypocotyl </para>
      <para>was greater in the concentrations </para>
      <para>with AS, with the concentration of 1 </para>
      <para>mM producing the highest value (2.22 </para>
      <para>mm). When the seeds were exposed </para>
      <para>to an AS concentration of 1 mM, the </para>
      <para>seedlings showed shorter hypocotyls, </para>
      <para>but with a larger diameter (gure 4).</para>
      <para>The effect of AS on plant stem </para>
      <para>growth has been documented. The </para>
      <para>Cucumber seeds (Cucumis sativus </para>
      <para>L.) that were pre-treated with AS </para>
      <para>concentrations of 0.07; 0.18 and 0.29 </para>
      <para>mM presented stems thicker than </para>
      <para>the control (distilled water) where </para>
      <para>Longitud y diámetro del </para>
      <para>hipocótilo</para>
      <para>Al momento de la medición, todas </para>
      <para>las plántulas de todos los tratamientos </para>
      <para>presentaron una apariencia normal. </para>
      <para>AS concentrations at 0.07 and 0.18 </para>
      <para>mM had better results (Sadoun and </para>
      <para>Mohamed, 2016). Similar results were </para>
      <para>obtained by Rodríguez-Larramendi </para>
      <para>et al. (2017) in bean cultivation </para>
    </sect2>
    <sect2 id="pfe">
      <para>
        <inlinegraphic fileref="embedded:Image4" width="4.7083inch" depth="1.7429inch"/>
      </para>
      <para>56</para>
      <para>Esta publicación cientíca en formato digital es continuación de la Revista Impresa: Depósito legal pp 196802ZU42, ISSN 0378-7818.</para>
      <para>Rev. Fac. Agron. (LUZ). 2021, 38: 43-59. Enero-Marzo.</para>
      <para>Gordillo et al. ISSN 2477-9407</para>
      <para>Se observó un efecto signicativo del </para>
      <para>factor concentración del AS sobre la </para>
      <para>longitud y el diámetro del hipocótilo, </para>
      <para>no así entre la interacción de la </para>
      <para>concentración y tiempo de inmersión </para>
      <para>del AS. Las concentraciones 0,0125 </para>
      <para>y 0,025 mM fueron mejores que el </para>
      <para>testigo, formando hipocótilos más </para>
      <para>largos, entre 3 y 5 mm más que </para>
      <para>el testigo. La concentración de 1 </para>
      <para>mM originó hipocótilos más cortos </para>
      <para>(42 mm), al igual que el testigo. El </para>
      <para>diámetro del hipocótilo fue mayor en </para>
      <para>las concentraciones con AS, siendo </para>
      <para>la concentración de 1 mM la que </para>
      <para>produjo el mayor valor (2,22 mm). </para>
      <para>Cuando las semillas se expusieron a </para>
      <para>una concentración de AS de 1 mM, las </para>
      <para>plántulas mostraron hipocótilos más </para>
      <para>cortos, pero de mayor diámetro (gura </para>
      <para>4).</para>
      <para>Figura 4. Efecto de la imbibición de concentraciones de ácido salicílico en semillas de </para>
      <para>Coffea arabica L., sobre la longitud y diámetro del hipocótilo.</para>
      <para>Figure 4. Imbibition effect of salicylic acid concentrations in Coffea arabica L. seeds, on </para>
      <para>the length and diameter of the hypocotyl.</para>
      <para>El efecto del AS en el crecimiento </para>
      <para>del tallo de plantas ha sido </para>
      <para>documentado. Semillas de pepino </para>
      <para>(Cucumis sativus L.) que fueron pre-</para>
      <para>(Phaseolus vulgaris L.), who found that </para>
      <para>imbibition of bean seeds with AS at a </para>
      <para>concentration of 0.01 mM increased </para>
      <para>stem length. On the other hand, </para>
      <para>Hayat et al. (2005), demonstrated that </para>
      <para>wheat seedlings (Triticum aestivum </para>
      <para>L.) increased the number of leaves, </para>
      <para>fresh and dry weight, when the seeds </para>
      <para>were soaked at a AS concentration </para>
      <para>of 0.01 mM. In these seedlings </para>
      <para>there was greater activity of nitrate </para>
      <para>reductase and carbonic anhydrase, </para>
      <para>which allowed us to evaluate the </para>
      <para>assimilation of nitrogen and carbon. </para>
      <para>In the cultivation of papaya (Carica </para>
      <para>papaya L.) Hayat et al. (2013), found </para>
      <para>that AS concentrations at 0.0001; 0.01 </para>
      <para>and 1.0 µmol increased the height a 10 </para>
      <para>% and the stem diameter a 3.5 %.</para>
      <para>Rivas-San Vicente and Plasencia </para>
      <para>(2011), mention that AS in coordination </para>
      <para>with cytokines, ethylene, gibberellins, </para>
      <para>auxins and jasmonic acid contributes </para>
      <para>signicantly to the regulation of plant </para>
      <para>growth and development, although </para>
    </sect2>
    <sect2 id="pff">
      <para>
        <inlinegraphic fileref="embedded:Image5" width="2.3264inch" depth="0.0417inch"/>
      </para>
      <para>57</para>
      <para>Esta publicación cientíca en formato digital es continuación de la Revista Impresa: Depósito legal pp 196802ZU42, ISSN 0378-7818.</para>
      <para>Rev. Fac. Agron. (LUZ). 2021, 38: 43-59. Enero-Marzo.</para>
      <para>Gordillo et al. ISSN 2477-9407</para>
      <para>End of English Version</para>
      <para>tratadas en concentraciones de 0,07; </para>
      <para>0,18 y 0,29 mM de AS, dieron como </para>
      <para>resultado tallos más gruesos que el </para>
      <para>testigo (agua destilada) donde las </para>
      <para>concentraciones de AS de 0,07 y 0,18 </para>
      <para>mM presentaron mejores resultados </para>
      <para>(Sadoun y Mohamed, 2016). </para>
      <para>Resultados similares obtuvieron </para>
      <para>Rodríguez-Larramendi et al. (2017) </para>
      <para>en el cultivo de frijol (Phaseolus </para>
      <para>vulgaris L.), quienes encontraron </para>
      <para>que la imbibición de semillas de </para>
      <para>frijol con AS a una concentración </para>
      <para>de 0,01 mM incrementó la longitud </para>
      <para>del vástago; por otra parte, Hayat </para>
      <para>et al. (2005), demostraron que </para>
      <para>las plántulas de trigo (Triticum </para>
      <para>aestivum L.) aumentaron el número </para>
      <para>de hojas, peso fresco y seco, cuando </para>
      <para>las semillas fueron remojadas en </para>
      <para>una concentración de AS de 0,01 </para>
      <para>mM. En estas plántulas hubo mayor </para>
      <para>actividad de la nitrato reductasa y </para>
      <para>de la anhidrasa carbónica, lo que </para>
      <para>permitió evaluar la asimilación </para>
      <para>del nitrógeno y del carbono. En el </para>
      <para>cultivo de papaya (Carica papaya </para>
      <para>L.) Hayat et al. (2013), encontraron </para>
      <para>que concentraciones de AS a 0,0001; </para>
      <para>0,01 y 1,0 µmol, aumentaron en 10 % </para>
      <para>la altura y en 3,5 % el diámetro del </para>
      <para>tallo.</para>
      <para>Rivas-San Vicente y Plasencia </para>
      <para>(2011), mencionan que el AS en </para>
      <para>coordinación con las citokininas, el </para>
      <para>etileno, las giberelinas, las auxinas </para>
      <para>y el ácido jasmónico contribuye de </para>
      <para>manera importante a la regulación </para>
      <para>del crecimiento y del desarrollo de </para>
      <para>las plantas, aunque los mecanismos </para>
      <para>bioquímicos que median la mayoría </para>
      <para>de estas respuestas siguen siendo en </para>
      <para>gran medida desconocidos. </para>
      <para>the Biochemical mechanisms that </para>
      <para>mediate most of these responses </para>
      <para>remain largely unknown. </para>
      <para>Conclusions</para>
      <para>Salicylic acid causes an acceleration </para>
      <para>and increase in the percentage </para>
      <para>of germination of coffee seeds in </para>
      <para>concentrations of 0.0125; 0.025 and </para>
      <para>0.05 mM, with imbibition times of 3 </para>
      <para>and 4 hours, due to the participation </para>
      <para>of salicylic acid in the regulation of </para>
      <para>the concentrations of the hormones </para>
      <para>involved in seed germination. </para>
      <para>Furthermore, they stimulated the </para>
      <para>growth of hypocotyls, being longer </para>
      <para>and thicker than the control. These </para>
      <para>ndings show that salicylic acid </para>
      <para>applied in low concentrations can be </para>
      <para>used to improve the germination of </para>
      <para>coffee seeds and induce the initial </para>
      <para>growth of coffee seedlings and it could </para>
      <para>be considered a viable option for coffee </para>
      <para>growers as its easy application as a </para>
      <para>safety product.</para>
      <para>Conclusiones</para>
      <para>El ácido salicílico provoca una </para>
      <para>aceleración y aumento en el porcentaje </para>
      <para>de germinación de semillas de café en </para>
      <para>concentraciones de 0,0125; 0,025 y </para>
      <para>0,05 mM, con tiempos de imbibición </para>
      <para>de 3 y 4 horas debido probablemente a </para>
      <para>la participación del ácido salicílico en </para>
      <para>la regulación de las concentraciones </para>
      <para>de las hormonas que participan </para>
      <para>en la germinación de las semillas. </para>
      <para>Además, estimularon el crecimiento </para>
    </sect2>
    <sect2 id="pf10">
      <para>58</para>
      <para>Esta publicación cientíca en formato digital es continuación de la Revista Impresa: Depósito legal pp 196802ZU42, ISSN 0378-7818.</para>
      <para>Rev. Fac. Agron. (LUZ). 2021, 38: 43-59. Enero-Marzo.</para>
      <para>Gordillo et al. ISSN 2477-9407</para>
      <para>de hipocótilos, siendo más largos y </para>
      <para>gruesos que el testigo. Estos hallazgos </para>
      <para>demuestran que el ácido salicílico </para>
      <para>aplicado en bajas concentraciones </para>
      <para>puede ser utilizado para mejorar </para>
      <para>la germinación de semillas de café </para>
      <para>e inducir el crecimiento inicial de </para>
      <para>plántulas de cafetos, al tiempo que </para>
      <para>pudiera considerarse como una opción </para>
      <para>viable para los productores cafetaleros, </para>
      <para>tanto por su fácil aplicación como la </para>
      <para>inocuidad del producto.</para>
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