Infección por Sarcocystis aucheniae (Apicomplexa: Sarcocystidae) en tejido muscular de alpacas y llamas en Huancavelica, Perú

  • Víctor Carhuapoma–Delacruz Universidad Nacional de Huancavelica, Centro de Investigación Científica Multidisciplinaria de Ingeniería. Huancavelica, Perú
  • Melanio Jurado–Escobar Universidad Nacional de Huancavelica. Escuela Profesional de Zootecnia. Huancavelica, Perú
  • Nicasio Valencia–Mamani Universidad Nacional de Huancavelica, Centro de Investigación Científica Multidisciplinaria de Ingeniería, Laboratorio de Salud Animal. Huancavelica, Perú
  • Manuel Castrejón Valdez Universidad Nacional de Huancavelica. Escuela Profesional de Zootecnia. Huancavelica, Perú
  • Víctor Guillermo Sánchez–Araujo Universidad Nacional de Huancavelica, Escuela Profesional de Ingeniería Ambiental y Sanitaria. Huancavelica, Perú
  • Arnaldo Virgilio Capcha–Huamaní Universidad Nacional de Huancavelica, Facultad de Enfermería, Escuela Profesional de Enfermería. Huancavelica, Perú
  • Blas Oscar Sánchez–Ramos Universidad Nacional Autónoma de Tayacaja “Daniel Hernández Morillo”, Escuela Profesional de Enfermería, Jr. José Olaya. Huancavelica, Perú.
  • Mario Esparza Universidad Privada Norbert Wiener, Vicerrectorado de Investigación, Dirección de Investigación Científica. Lima, Perú
Palabras clave: Camélido, lesión, musculo, infección, Sarcocystis

Resumen

El Sarcocistosis es una patología de importancia clínica en salud pública por su actividad neurotóxica, sin embargo, es limitado el conocimiento del grado de infección en tejidos musculares de camélidos. En este trabajo se evaluaron el nivel infección de Sarcocystis aucheniae en tejido muscular de alpacas y llamas faenadas para consumo humano. Se consideraron 969 alpacas y 800 llamas positivos a S. aucheniae faenadas en el matadero Municipal de Huancavelica, Perú. La detección del Sarcocystis en tejidos musculares (cuello, costillar, diafragma y zona inguinal) se hizo mediante observación directa e identificación macroscópica y el nivel de infección mediante el método no destructivo. Se encontraron infección a S. aucheniae en alpacas (68 %) y llama (76 %) siendo susceptibles en animales machos. El nivel de infección al parásito fue alto en el cuello (74–85 %) y zona inguinal (59–68 %) en alpacas y llamas, con frecuencias altas en el cuello (58 %) y zona inguinal (100 %) en más de tres lugares de procedencias, con predominio de infección en cuello (75 %), zona inguinal (70 %) en alpacas Suri y en llamas Chacu (87 %), fluctuando frecuencias entre 60 a 90 % en animales de boca llena y cuatro dientes en ambas especies. Alpacas y llamas hembras presentaron mayor infección en el cuello (78–86 %) y en machos en la zona inguinal (60–70 %); así mismo resultaron mayor infección en el cuello y zona inguinal en animales con condición corporal buena y obesos (62 a 100 %) en ambas especies. Se evidenciaron alto nivel de infección de S. aucheniae en el tejido muscular de alpacas y llamas, siendo susceptibles al parásito animales de sexo macho.

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Citas

Siuce J, Manchego A, Sandoval N, More J, Chiok KL, Pezo D, Rivera H. Expresión de defensinas en yeyuno de crías de alpacas (Vicugna pacos) con enteropatías. Rev. Investig. Vet. Perú. [Internet] 2015; 26(2):317–327. doi: https://doi.org/g8w5ft

Popova T, Tejeda L, Peñarrieta JM, Smith, MA, Bush RD, Hopkins DL. Meat of South American camelids – sensory quality and nutritional composition. Meat Sci. [Internet]. 2021; 171:108285. doi; https://doi.org/g8w5fv

Martin M, Decker–Franco C, Romero S, Carletti T, Schnittger O, Florin–Christensen M. Molecular detection of Sarcocystis aucheniae in the blood of llamas from Argentina. Rev. Argent. Microbiol. [Internet]. 2016; 48(3):200–205. doi: https://doi.org/g8w5fw

Biffin TE, Smith MA, Bush RD, Morris S, Hopkins DL. The effect of whole carcase médium voltage electrical stimulation, tenderstretching and longissimus infusion with actinidin on alpaca meat quality. Meat Sci. [Internet]. 2020; 64:108107. doi: https://doi.org/g8w5fx

Romero S, Carletti T, Decker–Franco C, Moré G, Schnittger L, Florin–Christensen M. Seropositivity to Sarcocystis infection of llamas correlates with breeding practices. Vet. Parasitol. Reg. Stud. Reports [Internet]. 2017; 10:65–70. doi: https://doi.org/gn7q62

Veronesi F, Di Palma S, Gabrielli S, Morganti G, Milardi GL, Middleton B, Lepri E. Sarcocystis gigantea infection associated with granulomatous eosinophilic myositis in a horse. J. Vet. Diagnost. Investig. [Internet]. 2020; 32(4):611–615. doi: https://doi.org/g8w5fz

Amairia S, Jbeli, M, Mrabet S, Mahjoubi–Jebabli L, Gharbi M. Molecular prevalence of Sarcocystis spp. and Toxoplasma gondii in slaughtered equids in northern Tunisia. J. Equine Vet. Sci. [Internet]. 2023; 129:104894. doi: https://doi.org/g8w5f2

Irikura D, Saito M, Sugita–Konishi Y, Ohnishi T, Sugiyama KI, Watanabe M, Yamazaki A, Izumiyama S, Sato H, Kimura Y, Doi R, Kamata Y. Characterization of Sarcocystis fayeri’s actin–depolymerizing factor as a toxin that causes diarrhea. Genes Cells. [Internet]. 2017: 22(9):825–835. doi: https://doi.org/g8w5f3

Saeed MA, Rashid MH, Vaughan J, Abdul J. Sarcocystosis in South American camelids: The state of play revisited. Parasit. Vectors [Internet]. 2018; 11(146):1–11. doi: https://doi.org/g8w5f4

Wu Z, Sun J, Hu J, Song J, Deng S, Zhu N, Yang Y, Tao J. Morphological and molecular characterization, and demonstration of a definitive host, for Sarcocystis masoni from an Alpaca (Vicugna pacos) in China. Biology [Internet]. 2022; 11(7):1016. doi: https://doi.org/g8w5f5

Dubey JP, Calero–Bernal R, Rosenthal BM, Speer CA, Fayer R. Sarcocystosis of animals and humans [Internet]. 2nd ed. Boca Raton (Florida, EUA): CRC Press; 2016. 501 p. doi: https://doi.org/nx3r

Sazmand A, Joachim A. Parasitic diseases of camels in Iran (1931–2017) – a literature review. Parasite [Internet]. 2017; 24(21). doi: https://doi.org/gbjxch

Jiang N, Xin S, Zhu N, Yang L, Huang W, Hu J, Zhu X, Yang Y. First report of Sarcocystis masoni in a captive Alpaca (Vicugna pacos) from China. Front. Vet. Sci. [Internet]. 2021; 8:759252. doi: https://doi.org/g8w5f6

Moré G, Regensburger C, Laura Gos M, Pardini L, Verma SK, Ctibor J, Serrano–Martínez ME, Dubey JP, Venturini MC. Sarcocystis masoni, n. sp. (Apicomplexa: Sarcocystidae), and redescription of Sarcocystis aucheniae from llama (Lama glama), guanaco (Lama guanicoe) and alpaca (Vicugna pacos). Parasitology [Internet]. 2016; 143(5):617–626. doi: https://doi.org/f8g73r

Decker Franco C, Romero S, Ferrari A, Schnittger L, Florin–Christensen M. Detection of Sarcocystis aucheniae in blood of llama using a duplex semi–nested PCR assay and its association with cyst infestation. Heliyon [Internet]. 2018; 4(11):e00928. doi: https://doi.org/gj5r2q

Mohamed–Moustafa MA, Shimozuru M, Mohamed W, Taylor KR, Nakao R, Sashika M, Tsubota T. First molecular detection and characterization of Hepatozoon and Sarcocystis spp. in field mice and voles from Japan. Parasitol. Res. [Internet]. 2017; 116(8):2321–2325. doi: https://doi.org/gbqxr9

Lucas JR, Barrios–Arpi M, Rodríguez J, Balcázar–Nakamatsu S, Zarria J, Namiyama G, Taniwaki N, Gonzales–Viera O. Ultrastructural description of Sarcocystis sp. in cardiac muscle of naturally infected alpacas (Vicugna pacos). Iran. J. Parasitol. [Internet]. 2019; 14(1):174–179. doi: https://doi.org/g8w5f7

Decker Franco C, Wieser SN, Soria M, de Alba P, Florin–Christensen M, Schnittger L. In silico identification of immunotherapeutic and diagnostic targets in the glycosylphosphatidylinositol metabolism of the coccidian Sarcocystis aucheniae. Transbound. Emerg. Dis. [Internet]. 2020; 67(12):165–174. doi: https://doi.org/g8w5f8

Servicio Nacional de Meteorología e Hidrología del Perú (SENAMHI). Datos hidrometeorológicos a nivel nacional 2021. Lima (Perú): Ministerio del Ambiente, SENAMHI; 2021. 23 p.

Ministerio de Desarrollo Agrario y Riego (MIDAGRI). Camélidos sudamericanos. Lima (Perú): Ministerio de Desarrollo Agrario y Riego; 2021. 22 p.

Proost K, Boone MN, Josipovic I, Pardon B, Chiers K, Vlaminck L. Clinical insights into the three–dimensional anatomy of cheek teeth in alpacas based on micro–computed tomography – Part 2: Maxillary cheek teeth. BMC Vet. Res. [Internet]. 2022; 18(1):6. doi: https://doi.org/g8w5f9

Daniel W. Bioestadística. Base para el análisis de las ciencias de la salud. 4ta. ed. México DF (México): Limusa; 2007. 924 p.

Wensley S, Betton V, Martin N, Tipton E. Advancing animal welfare and ethics in veterinary practice through a national pet wellbeing task force, practice–based champions and clinical audit. Vet. Rec. [Internet]. 2020; 187(8):316. doi: https://doi.org/grt554

Bayneet K, Turner PV. Animal welfare standards and international collaborations. Ilar J. [Internet]. 2019; 60(1):86–94. doi: https://doi.org/g8w5gb

Condori G, Ayala C, Renieri C, Gerken M, Antonini M, Quispe J. Determinación de la edad óptima de faeneo, calidad y características productivas de la carne de llama. RIIARn. [Internet]. 2018 [consultado 18 May. 2024]; 5(Especial):76–106. Disponible en: https://goo.su/fAG1vR

Song X, Bokkers EAM, van Mourik S, Groot Koerkamp PWG, van der Tol PPJ. Automated body condition scoring of dairy cows using 3–dimensional feature extraction from multiple body regions. J. Dairy Sci. [Internet]. 2019; 102(5):4294–4308. doi: https://doi.org/m6tq

Albornoz RI, Giri K, Hannah MC, Wales WJ. An improved approach to automated measurement of body condition score in dairy cows using a three–dimensional camera system. Animals [Internet]. 2021; 12(1):72. doi: https://doi.org/g8w5gc

Clarke LL, Breuer RM. Postmortem diagnoses in South American camelids and factors influencing diagnostic rate in the Upper Midwest USA, 2009–2019. J. Vet. Diagn. Invest. [Internet]. 2022; 34(4):727–732. doi: https://doi.org/g8w5gd

Condori–Quispe R, Loza–Murguía MG, Gutiérrez–Ramírez L, Condori–Condori C. Prevalencia de Sarcocystis spp. en musculo cardiaco de llamas (Lama glama) y alpacas (Vicugna pacos). J. Selva Andina Anim. Sci. [Internet] 2019; 6(2):39–46. doi: https://doi.org/g8w5gf

Moré G, Pantchev A, Skuballa J, Langenmayer MC, Maksimov P, Conraths FJ, Venturini MC, Schares G. Sarcocystis sinensis is the most prevalent thick–walled Sarcocystis species in beef on sale for consumers in Germany. Parasitol. Res. [Internet]. 2014; 113(6):2223–2230. doi: https://doi.org/g8w5gg

Zeng H, Van Damme I, Kabi TW, Šoba B, Gabriël S. Sarcocystis species in bovine carcasses from a Belgian abattoir: a cross–sectional study. Parasites Vectors [Internet]. 2021; 14(271). doi: https://doi.org/g8w5gh

Aceituno Huacani C, Silva Minauro R, Cruz Chuima R. Mitos y realidades de la investigación científica. Cusco (Perú): Alpha Servicios Gráficos; 2020; 114 p.

Gamarra Astuhuamán G, Wong Cabanillas F, Pujay Cristobal O, Rivera Espinoza TA. Estadística e Investigación con Aplicaciones de SPSS: Análisis de varianza con aplicativos de SPSS. 2da. ed. Lima (Perú): San Marcos; 2019. 352 p.

Rooney AL, Limon G, Vides H, Cortez A Guitian J. Sarcocystis spp. in llamas (Lama glama) in Southern Bolivia: a cross sectional study of the prevalence, risk factors and loss in income caused by carcass downgrades. Prev. Vet. Med. [Internet]. 2014; 116(3):296–304. doi: https://doi.org/f6j755

Velásquez L, Soncco J, Valderrama A. Sarcocystis aucheniae en camélidos sudamericanos y factores de riesgo en la provincia de Lucanas. Salud Tecnol. Vet. [Internet]. 2019; 7(1):8–13. doi: https://doi.org/g8w5gj

Wieser SN, Giuliano SM, Reategui Ordoñez J, Barriga Marcapura X, Olivera LVM, Chavez Fumagalli MA, Schnittger L, Florin–Christensen M. Sarcocystis spp. of New and Old–world camelids: ancient origin, present challenges. Pathogens [Internet]. 2024; 13(3):196. doi: https://doi.org/g8w5gk

Prakas P, Strazdaitė–Žielienė Ž, Januškevičius V, Chiesa F, Baranauskaitė A, Rudaitytė–Lukošienė E, Servienė E, Petkevičius S, Butkauskas D. Molecular identification of four Sarcocystis species in cattle from Lithuania, including S. hominis, and development of a rapid molecular detection method. Parasit. Vectors [Internet]. 2020; 13(1):610. doi: https://doi.org/g8w5gn

Gibson TJ, Whitehead C, Taylor R Sykes O, Chancellor NM, Limon G. Pathophysiology of penetrating captive bolt stunning in Alpacas (Vicugna pacos). Meat Sci. [Internet]. 2015; 100:227–231. doi: https://doi.org/g8w5gm

Publicado
2024-12-29
Cómo citar
1.
Carhuapoma–Delacruz V, Jurado–Escobar M, Valencia–Mamani N, Castrejón Valdez M, Sánchez–Araujo VG, Capcha–Huamaní AV, Sánchez–Ramos BO, Esparza M. Infección por Sarcocystis aucheniae (Apicomplexa: Sarcocystidae) en tejido muscular de alpacas y llamas en Huancavelica, Perú. Rev. Cient. FCV-LUZ [Internet]. 29 de diciembre de 2024 [citado 2 de enero de 2025];34(3):9. Disponible en: https://mail.produccioncientificaluz.org/index.php/cientifica/article/view/43173
Sección
Medicina Veterinaria