Susceptibilidad a fluconazol y voriconazol por el método de difusión, de cepas de Candida, aisladas de hemocultivos en Maracaibo, Venezuela
Resumen
Para determinar la susceptibilidad de cepas de Candida aisladas de hemocultivos en nuestro medio, se estudiaron 78 cepas obtenidas de pacientes hospitalizados en diferentes servicios del Servicio Autónomo Hospital Universitario de Maracaibo (SAHUM), Venezuela. Para la identificación de especies se usó el medio cromogénico Brilliance Candida Agar y Vitek-YBC. Adicionalmente, los cultivos fueron identificados por el método tradicional. La susceptibilidad fue determinada por el método de difusión con discos de fluconazol y voriconazol según la metodología M44-A2 del Clinical Laboratory Standard Institute. La frecuencia de las especies de Candida fue: C. parapsilosis 51,28%, C. tropicalis 15,38%, C. guilliermondii 11,54%, C. albicans 10,26% C. famata 6,41%, C. glabrata 3,85% y C. krusei 1,28%. La susceptibilidad fue de 96,15% y 100% para fluconazol y voriconazol, respectivamente. Tres de las 78 cepas, identificadas como C. albicans, C. guilliermondii y C. krusei fueron resistentes a fluconazol. Estos resultados sugieren que fluconazol y voriconazol pueden ser utilizados en el tratamiento de pacientes con candidemia en SAHUM, sin embargo, la vigilancia epidemiológica y la determinación de la susceptibilidad de Candida deben mantenerse.
Citas
(1) Rabagliati R, Fuentes G, Guzmán AM, Orellana E, Oporto J, Acedo I, et al. Enfermedad fúngica invasora en pacientes hemato-oncológicos y receptores de trasplante de precursores hematopoyéticos bajo la perspectiva de los criterios diagnósticos EORTC/MSG. Rev Chil Infect 2009; 26 (3): 212-219.
(2) Person AK, Kontoyiannis DP, Alexander BD. Fungal Infections in Transplant and
Oncology Patients. Infect Dis Clin North Am. 2010; 24: 439-459.
(3) Pfaller MA, Diekema DJ. Role of Sentinel Surveillance of Candidemia: Trends in Species Distribution and Antifungal Susceptibility. J Clin Microbiol. 2002; 40: 3551-3557.
(4) Pfaller MA, Diekema DJ, Gibbs DL, Newell VA, Meis JF, Gould IM, et als. Results from the ARTEMIS DISK Global Antifungal Surveillance Study, 1997 to 2005: an 8.5-Year Analysis of Susceptibilities of Candida Species and Other Yeast Species to Fluconazole and Voriconazole Determined by CLSI Standardized Disk Diffusion Testing. J Clin Microbiol. 2007; 45:1735-1745.
(5) Pfaller MA, Diekema DJ, Gibbs DL, Newell VA, Ellis D, Tullio V, et als. Results from the ARTEMIS DISK Global Antifungal Surveillance Study, 1997 to 2007: a 10.5-Year Analysis of Susceptibilities of Candida Species to Fluconazole and Voriconazole as Determined by CLSI Standardized Disk Diffusion. J. Clin. Microbiol. 2010; 48: 1366- 1377.
(6) National Committee for Clinical Laboratory Standards. 2002. Reference method for broth dilution antifungal susceptibility testing of yeasts; Approved standard. NCCLS document M27-A2. National Committee for Clinical Laboratory Standards, Wayne, Pa.
(7) EUCAST Definitive Document EDef 7.1: Method for the determination of broth dilution MICs of antifungal agents for fermentative yeasts. Subcommittee on Antifungal Susceptibility Testing (AFST) of the ESCMID European Committee for Antimicrobial Susceptibility Testing (EUCAST). Clin. Microbiol Infect 2008; 14:398-405.
(8) AB Biodisk, 1993. E-test technical guide Nº 4: antifungal susceptibility testing of yeast, AB Biodisk, Solna, Sweden.
(9) Sandven P. Detection of Fluconazole-Resistant Candida Strains by a Disk Diffusion Screening Test. J. Clin. Microbiol. 1999; 37: 3856-3859.
(10) Lee S, Fung Ch, Lee N, See L, Huang J, Tsai Ch, Chen K, et al. Fluconazole Disk Diffusion Test with Methylene Blue- and Glucose-Enriched Mueller-Hinton Agar for Determining Susceptibility of Candida Species. J Clin Microbiol. 2001; 39: 1615-1617.
(11) Matar MJ, Ostrosky-Zeichner L, Paetznick VL, Rodriguez JR, Chen E, Rex JH. Correlation between E-Test, Disk Diffusion, and Microdilution Methods for Antifungal Susceptibility Testing of Fluconazole and Voriconazole. Antimicrob Agents Chemother. 2003; 47: 1647-1651.
(12) Pfaller MA, Diekema DJ, Messer SA, Boyken L, Hollis RJ. Activities of Fluconazole and Voriconazole against 1,586 Recent Clinical Isolates of Candida Species Determined by Broth Microdilution, Disk Diffusion, and Etest Methods: Report from The ARTEMIS Global Antifungal Susceptibility Program, 2001. J Clin Microbiol. 2003 41:1440-1446.
(13) Barry AL, Pfaller MA, Rennie RP, Fuchs PC, Brown SD. Precision and Accuracy of Fluconazole Susceptibility Testing by Broth Microdilution, Etest, and Disk Diffusion Methods. Antimicrob Agents Chemother. 2002 46: 1781-1784.
(14) Rubio MC, Gil J, Ramírez-Ocáriz I, Benito R, Rezusta A. Comparison of Results Obtained by Testing with Three Different Agar Media and by the NCCLS M27-A Method for In Vitro Testing of Fluconazole against Candida spp. J Clin Microbiol. 2003; 41: 2665-2668.
(15) Hazen KC, Baron EJ, Colombo AL, Girmenia C, Sanchez-Sousa A, del Palacio A, et al. Comparison of the Susceptibilities of Candida spp. to Fluconazole and Voriconazole in a 4-Year Global Evaluation Using Disk Diffusion. J Clin Microbiol. 2003; 41: 5623-5632.
(16) Clinical Laboratory Standard Institute (CLSI). 2009. Method for Antifungal Disk Diffusion Susceptibility Testing of Yeast, Approved Guideline-Second Edition. CLSI document M44-A2.
(17) Dolande M, Panizo M, Reviákina V, Ferrara G, Moreno X, Macero C et al. Candidemia en Venezuela. Red de Vigilancia a los Antifúngicos. Instituto Nacional de Higiene “Rafael Rangel”, Caracas-Venezuela. XVII Jornadas Nacionales y XV Zulianas de Infectología: Bol Venez Infectol 2009; 20:63.
(18) Reyes H, Pabón R, Torres J, Báez N, Mejía E, Santiago A. Susceptibilidad Antifúngica al Fluconazol y Voriconazol, en Pacientes Hospitalizados con Candidemia en los Hospitales Universitario de Caracas y “Dr. Domingo Luciani”. Caracas-Venezuela. XVII Jornadas Nacionales y XV Zulianas de Infectología: Bol Venez Infectol 2009; 20:63.
(19) Calvo B, Mesa L, Perozo A, Pineda M, Beltrán-Luengo H. Cambios en la Distribución de Especies de Candida Aisladas de Hemocultivos, en Pacientes del Servicio Autónomo del Hospital Universitario de Maracaibo, Venezuela. Kasmera 2010; 38: 106-117.
(20) Fenn JP, Segal H, Barland B, Denton D, Whisenant J, Holy Ch, et al. Comparison of updated Vitek Yeast Biochemical Card and API 20 C Yeast Identification Systems. J Clin Microbiol 1994; 32:1184-87.
(21) Land GA, Harrison BA, Hulme KL, Cooper BH, Byrd JC. Evaluation of new API 20C for yeast identification against conventional method. J Clin Microbiol 1979; 10:357-64.
(22) Ramani R, Gromadzkis S, Pincus D, Salkin I, Chatuverdi V. Efficacy of API 20 C and ID 32C Systems for Identification of Common and Rare Clinical Yeast Isolates. J Clin Microbiol 1998; 36:3396-98.
(23) Krutzman C, Fell V. The Yeast, a taxonomic study. 4ª ed. Elsevier Science. B.V.Amsterdam; 1998. 1055pp.
(24) Mesa L, Arcaya N, Pineda M, Beltrán H, Calvo, B. Candidemia en el Hospital Universitario de Maracaibo, Estado Zulia, Venezuela 2000-2002. Rev Soc Ven Microbiol 2005;25:109-13.
(25) Colombo A, Nucci M, Park B, Nouér S, Arthington-Skaggs B, da Matta D, Warnock B, MorganJ. For the Brazilian Network Candidemia Study. Epidemiology of Candidemia in Brazil: a Nationwide Sentinel Surveillance of Candidemia in Eleven Medical Centers. J Clin Microbiol. 2006, 44: 2816-2823.
(26) Colombo A, Guimeraes T, Silva L, Almeida LP; Cunha AV, Rady P et al. Prospective Observational Study of Candidemia in Sao Paulo, Brasil: Incidence, Rate, Epidemiology and Predictors of Mortality. Infect Control Hosp Epidemiol 2007; 28:570-76.
(27) Dolande M, ReviákinaV, Panizo M, Macero C, Moreno X, Calvo A et al Distribución y sensibilidad a los antifúngicos de aislamientos clínicos de Candida en seis centros de salud del área metropolitana de Caracas, Venezuela (años 2003-2005). Rev Iber Micol. 2008; 25:41-45.
(28) González G, Elizondo M, Ayala J. Trends in Species Distribution and Susceptibility of Bloodstream Isolates of Candida Collected in Monterrey, Mexico, to Seven Antifungal Agents: Results of a 3-Year (2004 to 2007) Surveillance Study. J Clin Microbiol. 2008; 46:2902-05.
(29) Zuluaga A, de Bedout C, Agudelo C, Hurtado H, Arango M, Restrepo A, et al. Sensibilidad a fluconazol y voriconazol de especies de Candida aisladas de pacientes provenientes de unidades de cuidados intensivos en Medellín, Colombia (2001–2007) Rev Iberoam Micol. 2010; 27:125-9.
(30) Rodero L, Córdoba S, Vivot W, Campo M, Corfield P, Olguín C, et al. Método de difusión con discos para la determinación de sensibilidad a fluconazol en aislamientos de Candida spp. Rev Argent Microbiol.2006;38: 155-63.
(31) Córdoba S, Vivot W, Isla G, Taverna C, Szusz W, Davel G. Utilidad de tres métodos por difusión para detectar resistencia a fluconazol y voriconazol en Candida spp. de origen clínico. Rev Enferm Infecc Emergentes. 2009; 4: 30-32.
(32) Torres N, Álvarez C, Rondón M. Evaluación mediante tres técnicas de susceptibilidad a fluconazol en especies de Candida aisladas en pacientes con infecciones invasoras. Bogotá – Colombia. Rev Chil Infect. 2009; 26(2): 135-143.
(33) Arcaya N., Mesa L., Pineda M., Beltran- Luengo H., Calvo B. Perfil de sensibilidad antifúngica de especies de Candida aisladas de hemocultivos en un Hospital Universitario, Maracaibo, Venezuela. Rev Iberoam Micol. 2006; 23:97-100.
(34) Trofa D, Gácser A, Nosanchuk J. Candida parapsilosis, an Emerging Fungal Pathogen. Clin Microbiol Rev. 2008; 21:606-625.
(35) Pfaller MA, Diekema DJ, Mendez M, Kibbler C, Erzsebet P, Chang S. et al. Candida guilliermondii, an Opportunistic Fungal Pathogen with Decreased Susceptibility to Fluconazole: Geographic and Temporal Trends from the ARTEMIS DISK Antifungal Surveillance Program. J Clin Microbiol. 2006; 40: 3551-3556.
(36) Horn D, Neofytos D, Anaissie E, Fishman J, Steinbach W, Olyaei A et al. Epidemiology and Outcomes of Candidemia in 2019 Patients: Data from the Prospective Antifungal Therapy Alliance Registry. Clin Infect Dis. 2009; 48: 1695-1703.
Derechos de autor 2011 Armindo Perozo Mena, Belinda Calvo, Luzmila Mesa, Maritza Pineda
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