Rev. Téc. Ing. Univ.
Zulia. Vol. 44,
Nº 2, Mayo-Agosto, 2021, 62-74
Biodiversidad bacteriana en un riachuelo con vertido continuo
de efluentes de hidrocarburos
Marelis M.
Ruiz1*, Elen B. de Souza Carvalho2,
Bruno C. Ladeira3 y Marcelo A. de Oliveira4
1Facultad
de Ingeniería, Escuela de Industrial, Universidad del Zulia, Maracaibo, C.P
4001, Venezuela
2 Laboratorio de Tecnología de DNA,
Universidad Federal do Amazonas UFAM, Manaos-AM, C.P 69067-005, Brasil
3Petrobras
(UN-AM), Gerencia de Seguridad, Medio Ambiente y Salud. C.P 69055-035, Manaos,
Brasil
4Facultad
de Tecnología-Departamento de Ingeniería de Producción, Universidad Federal del
Amazonas UFAM, Manaos-AM, C.P 69080-900, Brasil
*Autor
de correspondencia: marelis_ruiz@yahoo.es
https://doi.org/10.22209/rt.v44n2a01
Recepción:
13 de abril de 2020 | Aceptación: 14 de diciembre de 2020 | Publicación: 01 de
abril de 2021
Resumen
Desde el inicio de sus operaciones, la provincia petrolera de Urucu (Petrobras unidad Amazonas, Brasil, UN-AM) ha
realizado el vertido continuo de efluentes de hidrocarburos en riachuelos
alrededor de sus instalaciones. El objetivo de
esta investigación fue realizar un análisis de la comunidad bacteriana existente en un riachuelo
(comunidad 1: antes del vertido, comunidad 2: después del vertido). Se
colectaron muestras de agua en riachuelo para extraer el DNA genómico total
y usarlo como molde en la PCR, con oligonucleótidos específicos del gen
16S rDNA para dominio Bacteria. El producto de la PCR
fue amplificado, y las secuencias generadas por técnica de pirosecuenciación,
fueron analizadas con el programa libre
Mothur. Los resultados revelaron que el filo Acidobacteria,
la clase Deltaproteobacteria y los géneros Gp3 y Geobacter,
mostraron alta presencia en comunidad 1. Asimismo, el filo Proteobacteria fue el más abundante, con la clase Betaproteobacteria y los géneros Geobacter y
Gp3,
como los predominantes en comunidad 2.
Los índices de riqueza presentaron variación porcentual en ambas comunidades (disminución
e incremento), siendo la diversidad más abundante en la comunidad 1. Sin
embargo, no se encontró diferencia significativa entre ambas comunidades (p>0,001), y todas muestras de cada comunidad presentaron
la misma estructura genética (p<0,05).
El 25 % de los géneros bacterianos se consideraron “no clasificados”, y aproximadamente
el 15 % de los géneros fueron clasificados como biorremediadores.
Estos datos representan un desafío para la exploración biotecnológica en este
ecosistema, con potencial para identificar y clasificar nuevos grupos
taxonómicos.
Palabras clave: actividad petrolera, Amazonia, análisis
metagenómico, gen 16S rDNA,
índices de riqueza y diversidad.
Bacterial
biodiversity analysis in a stream with continuous disposal of hydrocarbon
effluents
Abstract
Since the beginning of its operations, the Urucu petroleum province (Petrobras, Amazonas unit – AM, Brazil) has been continuously discarding industrial wastewater from an effluent dike in a small water stream outside of the perimeter of its operational area. The objective of this research was to perform a study of the bacterial community existent in a small water stream (community 1: prior to effluent disposal, community 2: after effluent disposal) Water samples from the stream were collected to totally extract their genomic DNA and subsequently utilize it as a template in the PCR using specific oligonucleotides of 16S rDNA gene from the Bacteria domain. The PCR product was amplified, and the sequences obtained through a pyrosequencing method were analyzed using the free software Mothur. The results obtained from the software revealed the Acidobacteria phylum, Deltaproteobacteria class, and the Gp3 and Geobacter genus were all preponderant in community 1. Likewise, in community 2, the Proteobacteria phylum, Betaproteobacteria class, and the Gp3 and Geobacter genus were preponderant. The richness indexes reported a percentage change (both decrease and increase) for both communities; furthermore, these indicated that the diversity was more abundant in community 1. However, no significant variance was observed between both communities (p>0.001) and all samples from each community yielded identical genetic structures (p<0.05). The 25 % of the bacterial genders were cataloged as “unclassified”, and approximately 15 % of the genders were cataloged as bio-remediators. The aforementioned data represents a challenge for biotechnological exploration in this environment, with the potential to identifying and classifying new taxonomic groups.
Keywords: Amazon, metagenomic study, oil activity, richness and diversity indexes,
16S rDNA gene.
Introducción
Una
gran parte de la biodiversidad en los ecosistemas amazónicos está representada
por hongos y bacterias. En las muestras ambientales, la estructura de las
comunidades bacterianas es altamente compleja y diversa (Torsvik et al., 1990),
y esta complejidad representa un desafío para la biotecnología. Con respecto a
los microorganismos biorremediadores de ambientes contaminados, los mismos se
encuentran ampliamente distribuidos en el suelo y cuerpos de agua, cuyas
comunidades normalmente constituyen menos que 1% de la comunidad bacteriana
total, pero cuando los hidrocarburos están presentes, estas comunidades
aumentan en 10% (Atlas y Cerniglia, 1995). Ciertas
estimaciones indican que aproximadamente 99 % de los microorganismos presentes
en muchos ambientes naturales, no son cultivables en laboratorio mediante
técnicas tradicionales de cultivo (Amann et al., 1995). Los avances
recientes en biología molecular, especialmente en la tecnología de
secuenciación del ácido desoxirribonucleico (DNA, según sus siglas en inglés),
han brindado más oportunidades para estudios exhaustivos de microorganismos en diversos
ecosistemas (Parmar et al., 2019), específicamente realizando análisis metagenómico (genomas secuenciados directamente de la
muestra ambiental, sin necesidad de cultivo y aislamiento de microorganismos en
laboratorio), para determinar de manera más realista la diversidad bacteriana (Peixoto et al.,
2011).
En medio de la región amazónica brasileña, la provincia
petrolera de Urucu constituye el único activo de producción de petróleo y gas
de la empresa Petrobras (unidad Amazonas UN-AM). Desde el inicio de sus
operaciones en el año 1988, los efluentes industriales de esta provincia
petrolera, son vertidos en pequeños riachuelos alrededor del área operacional,
desde un dique de efluentes. Esto después de realizar el control en la estación
de tratamiento de efluentes (ETE), validando que los parámetros fisicoquímicos
estén dentro de la normativa ambiental del Consejo Nacional del Medio Ambiente,
específicamente la norma Nº 357 (marzo de 2005) (CONAMA, 2005).
A
pesar del cumplimiento de la normativa ambiental para el vertido de efluentes
en cuerpos de agua de la provincia petrolera de Urucu, la empresa Petrobras
(UN-AM) no ha realizado una evaluación de los microorganismos existentes en el ecosistema
del riachuelo donde se vierten los efluentes desde el inicio de sus operaciones,
lo cual es fundamental para conocer la biodiversidad (análisis taxonómico) y garantizar
la conservación del mismo. La taxonomía es la ciencia que identifica una
especie, la cual es un grupo de individuos (especímenes) que muestran, en mayor
o menor grado, la variabilidad intrapoblacional
siempre presente (Bicudo, 2004). Entre las diferentes herramientas tecnológicas para
realizar análisis de taxonomía, determinación de índices de riqueza y
diversidad, así como la diferencia estadística entre las comunidades de
estudio, se encuentra el programa libre
Mothur (Schloss, 2009).
El
objetivo de esta investigación fue realizar un análisis de la comunidad bacteriana existente en un riachuelo
(comunidad 1: antes del vertido, comunidad 2: después del vertido), donde es
realizado el vertido continuo de efluentes por la empresa Petrobras (unidad Amazonas UN-AM), para identificar taxonómicamente los microorganismos y
comparar estadísticamente la riqueza y diversidad existente en este ecosistema.
Materiales y Métodos
Área de estudio
El
estudio fue desarrollado en la provincia petrolera de Urucu, denominada base operacional
de Petrobras geólogo Pedro de Moura (BOGPM), con la
siguiente localización geográfica: 4º30´S/64º30´O; a 653 km de Manaos (línea
recta). Esta base se encuentra en la cuenca del río Urucu en el margen derecho
del río Solimões, en el municipio Coari,
estado Amazonas, Brasil.
Parte experimental
Después
de varias visitas al campo en la provincia petrolera de Urucu
(Petrobras UN-AM), en septiembre de 2011 se realizó la recolección de muestras
para esta investigación. Fueron seleccionados ocho puntos de colecta (4 puntos
aguas arriba del vertido y 4 puntos aguas abajo del vertido de efluentes),
recaudando en total 16 l de agua clasificadas como
comunidad 1 (riachuelo antes de vertido) y comunidad 2 (riachuelo después del
vertido), y depositados en botellas
de plástico esterilizadas, siendo 2 l por cada punto. Los datos y coordenadas
geográficas de todos los puntos de colecta de muestras, se encuentran en la
Tabla 1.
En
el laboratorio, las muestras fueron centrifugadas en tubos Falcon
de 50 ml, descartando el agua del sobrenadante, hasta obtener apenas el material
sólido (mínimo de 0,25 g requeridos para cada extracción de DNA). Para este
proceso se utilizó un centrifugador marca Eppendorf modelo 5810R, a una rotación de 4.000
rpm durante 10 min. Para la extracción del DNA total se siguió el procedimiento
recomendado por el fabricante del PowerSoilTM DNA Isolation Kit (MoBio Laboratories Inc., EE.UU.), a fin de realizar el estudio metagenómico de las muestras.
Tabla
1. Localización
de puntos de colecta de muestras de agua en el riachuelo con vertido continuo de efluentes de
hidrocarburos.
N° |
Lugar |
Código |
Coordenadas geográficas |
Profundidad de la colecta (m) |
1 |
Centro de riachuelo a 50 m aguas arriba |
P1 |
S 04° 51´ 40,4” O 065° 17´ 52,7” |
0,2 |
2 |
Orilla de riachuelo a 50 m aguas arriba |
P2 |
S 04° 51´ 40,4” O 065° 17´ 52,7” |
0,2 |
3 |
Centro de riachuelo a 80
m aguas arriba |
P3 |
S 04° 51´ 40,3” O 065° 17´ 52,8” |
0,3 |
4 |
Orilla de riachuelo a 80 m aguas arriba |
P4 |
S 04° 51´ 40,3” O 065° 17´ 52,8” |
0,2 |
5 |
Centro de riachuelo a 50 m aguas abajo |
P5 |
S 04° 51´ 40,8” O 065° 17´ 50,8” |
0,3 |
6 |
Orilla de riachuelo a 50 m aguas abajo |
P6 |
S 04° 51´ 40,8” O 065° 17´ 50,8” |
0,2 |
7 |
Centro de riachuelo a 80 m aguas abajo |
P7 |
S 04° 51´ 40,9” O 065° 17´ 50,4” |
0,2 |
8 |
Orilla de riachuelo a 80 m aguas abajo |
P8 |
S 04° 51´ 40,9” O 065° 17´ 50,3” |
0,2 |
Posteriormente,
el material fue colocado en un termociclador (AB Applied Biosystems
veriti 96 well Thermol cycler)
programado para realizar el siguiente ciclo de reacción en cadena de la
polimerasa (PCR, según sus siglas en inglés): desnaturalización inicial a 95 ºC
por 4 min, 35 ciclos de desnaturalización a 95 ºC por 1 min, anillamiento a 59 ºC
por 1 min y extensión a 72 ºC por 40 seg; seguida de extensión final a 72 ºC
por 5 min. Se utilizaron cuatro tipos de iniciadores (primers): MID1, MID2, MID3 y MID4, combinando todas las muestras
con cada uno de estos, para luego ser corridos en dos plataformas diferentes,
utilizando la técnica de pirosecuenciación (454
Roche).
Para
facilitar el análisis posterior, las muestras fueron agrupadas en dos
comunidades, catalogadas de la siguiente manera:
- Comunidad
1: conformado por las muestras P1, P2, P3 y P4.
- Comunidad
2: conformado por las muestras P5, P6, P7 y P8.
La
mezcla para PCR fue compuesta por 5 µl de DNA de cada muestra, 1 µl del primer iniciador, 1 µl del iniciador
reverso, enzima taq DNA polimerasa y agua ultra pura Milli-Q (agua desionizada) para completar una solución
final de 25 µl. La PCR fue realizada por quintuplicado para las ocho muestras,
y la combinación de los iniciadores con las diferentes muestras o bibliotecas,
fue la siguiente (la especificación de los iniciadores se encuentra descrita en
la Tabla 2):
- Muestra 1: P1 con MID1 -
Muestra 5: P5 con MID1
- Muestra 2: P2 con MID2 -
Muestra 6: P6 con MID2
- Muestra 3: P3 con MID3 -
Muestra 7: P7 con MID3
- Muestra 4: P4 con MID4 -
Muestra 8: P8 con MID4
Tabla 2. Iniciadores
utilizados en la amplificación de fragmentos de DNA para las comunidades del riachuelo con vertido continuo de efluentes de
hidrocarburos.
Tipo |
Especificación |
Secuencia
de nucleótidos (5’-3’) |
Iniciador reverso (primer reverse) |
Lib-L B Key 16S R |
CCTATCCCCTGTGTGCCTTGGCAGTCTCAGGGGACTACCAGGGTATCTAAT |
Iniciadores (primers forward) |
16S-LibL-F-MID1 |
CCATCTCATCCCTGCGTGTCTCCGACTCAGACACGACGACTACTCCTACGGRAGGCAGCAG |
16S-LibL-F-MID2 |
CCATCTCATCCCTGCGTGTCTCCGACTCAGACACGTAGTATACTCCTACGGRAGGCAGCAG |
|
16S-LibL-F-MID3 |
CCATCTCATCCCTGCGTGTCTCCGACTCAGACACTACTCGTACTCCTACGGRAGGCAGCAG |
|
16S-LibL-F-MID4 |
CCATCTCATCCCTGCGTGTCTCCGACTCAGACGACACGTATACTCCTACGGRAGGCAGCAG |
El proceso de purificación del DNA se
realizó utilizando el GFXTM PCR DNA and
gel band purification kit (GE Healthcare),
siguiendo el procedimiento indicado por el fabricante (corte de las bandas en
faja de 500 pares de base pb). Con el objetivo de
validar la purificación de las muestras, se realizó una electroforesis en gel
de agarosa 0,8 % y marcador de peso molecular 1 kb (1 kb= 1.000 pares de bases)
como referencia, 5 µl de cada muestra purificada, aproximadamente por 1 h a 70
volts.
Los productos finales de cada
tratamiento se almacenaron a una temperatura criogénica de -20 ºC, hasta ser
enviados a la empresa GenOne (Rio de Janeiro-RJ,
Brasil), para aplicar la técnica de Pirosecuenciación
(plataforma Roche 454) y obtener resultados íntegros de alta calidad en el
estudio metagenómico, aplicando el programa libre Mothur
(versión 1.34.0, febrero 2014) (Schloss, 2009).
Resultados y Discusión
Como
resultado de la aplicación de la técnica de Pirosecuenciación
(Roche 454), se obtuvieron secuencias de nucleótidos para todas las muestras
consideradas en el presente estudio, las cuales fueron analizadas mediante el programa
libre Mothur (Schloss, 2009).
Clasificación taxonómica
La
identificación y clasificación taxonómica para esta investigación, fue basada
en el programa libre Mothur. El análisis taxonómico fue realizado a nivel de:
filo, clase y género.
Filos
Se
encontraron 28 filos bacterianos catalogados científicamente, así como también
filos “no clasificados” (microorganismos no catalogados científicamente). La
Figura 1 presenta la proporción de los filos predominantes, con valores de
frecuencia relativa >0,1 % en alguna muestra.
Figura 1. Filos
bacterianos predominantes en las comunidades del riachuelo con vertido continuo de efluentes de hidrocarburos. Comunidad 1: antes
del vertido, comunidad 2: después del vertido.
Los filos predominantes en las dos
comunidades fueron de tipo “no clasificados” (>30 % de frecuencia relativa),
seguido de los filos Proteobacteria y Acidobacteria (<5 %). Se pudo observar
un incremento en el filo Proteobacteria en la comunidad 2, resultando un valor
máximo de frecuencia <4 %; diferente de la comunidad 1, que tuvo valor
máximo de frecuencia <3 %. Con relación al filo Acidobacteria, sucedió lo
contrario, la magnitud de frecuencia disminuyó en la comunidad 2 (<2 %), mientras
que en la comunidad 1, el valor máximo de frecuencia alcanzado fue de <4 %.
En un estudio realizado para analizar
la diversidad microbiana presente en el río Negro (afluente del Amazonas,
Brasil), se identificó como filo predominante (81 %) Proteobacteria
(Neves,
2013). Igualmente, el filo Proteobacteria fue el más abundante en todas
las muestras de ríos y lagos de la región amazónica de Brasil (Peixoto et al.,
2011; Rodrigues, 2011; Toyama, 2012), el cual es característico
de ambientes de agua dulce (Zwart et al., 2002).
Clases
Se
identificaron 40 clases bacterianas catalogadas científicamente y otras
desconocidas (no clasificadas). En la Figura 2, se presenta la distribución de
clases predominantes en las dos comunidades de estudio.
Figura 2.
Clases bacterianas predominantes en las comunidades del riachuelo con vertido continuo de efluentes de hidrocarburos. Comunidad 1: antes
del vertido, comunidad 2: después del vertido.
Las
clases con mayor frecuencia relativa en las dos comunidades fueron las "no
clasificadas" (<15 %). En la comunidad 1 la clase dominante fue Deltaproteobacteria (<6 %), seguida de la clase Betaproteobacteria (<5 %). Específicamente en la
comunidad 2, se observó una predominancia en la frecuencia de la clase Betaproteobacteria (<7 %), seguida de la clase Deltaproteobacteria (<6 %) y la clase
Alphaproteobacteria en tercer lugar (<4 %). La clase Alphaproteobacteria no
presentó variabilidad significativa en las dos comunidades (<5 %).
Con
relación al contexto anterior, Peixoto et al. (2011) obtuvieron la clase Betaproteobacteria como la más predominante en el río Negro
y la Betaproteobacteria en el río Solimões
(afluentes del rio Amazonas, Brasil). También Rodrigues
(2011) encontró como preponderante la clase Alphaproteobacteria en el estuario
del río Amazonas.
Géneros
Se
identificaron 267 géneros bacterianos, además de los "no clasificados".
En la Figura 3 pueden observarse los tipos de géneros dominantes, sin incluir
los géneros aún no clasificados, a fin de facilitar la visualización gráfica.
Figura 3. Géneros bacterianos predominantes (excepto los
“no clasificados”) en las comunidades del riachuelo con vertido continuo de efluentes de hidrocarburos. Comunidad 1: antes
del vertido, comunidad 2: después del vertido.
La comunidad 1 exhibió la mayor
frecuencia de géneros bacterianos, resultando como más dominantes los géneros Gp3 (<1,6 %), Geobacter y Gp1 (ambos <1
%) y 3_genus_incertae_cedis (<0,8 %).
Luego, en menor proporción (<0,2 %), siguieron los géneros Geotrix y Anaeromixobacter. Los géneros que presentaron porcentaje de
frecuencia relativa muy bajo, no son mostrados en este gráfico.
En
la comunidad 2, los géneros Geobacter (<1,2
%) y Gp3 (<0,5 %) fueron los más preponderantes,
seguidos del Gp1 (<0,4 %), el 3_genus_incertae_sedis, Anaeromyxobacter y Geothrix (todos <0,3 %).
Para una mejor visualización gráfica, los
géneros bacterianos “no clasificados” son presentados en la Figura 4. Se puede
observar que la mayor proporción de los géneros todavía no catalogados, se
encuentra en la comunidad 1 (<31 %), seguida de la comunidad de la comunidad
2 (≤25 %).
Figura 4. Proporción de géneros bacterianos "no clasificados"
en las comunidades del riachuelo con vertido continuo de efluentes de
hidrocarburos. Comunidad 1: antes del vertido, comunidad 2: después del
vertido.
El
género Gp3 pertenece al filo
Acidobacteria y la clase Acidobacteria_Gp3, el cual también fue identificado en
el estudio realizado por Neves (2013) en el río Negro
(<11 %). El género Geobacter, que
corresponde al filo Proteobacteria y la clase Deltaproteobacteria,
es estrictamente anaeróbico y capaz de degradar diversos compuestos orgánicos y
aromáticos (Kleinsteuber et al., 2012). Igualmente, el género Geobacter fue identificado con una frecuencia de 0,07 % en el río
Negro (Neves, 2013). También está el caso de estudio
de la comunidad microbiana del río Grangeiro, en el
cual el género Geobacter presentó una
frecuencia relativa aproximada de 41 % de genes resistentes al zinc (Xavier et al.,
2019).
El
género 3_genus_incertae_sedis pertenece al filo Verrucomicrobia
y a la clase subdivision
3. El filo Verrucomicrobia
representa una fracción significativa de las comunidades de agua dulce (Nishimura y Nagata, 2007), sin embargo, también
representa entre 2-8 % de la comunidad bacteriana observada en la rizosfera (Kielak et al., 2008). El género Geothrix que pertenece al filo
Acidobacteria y a la clase Holophagae, es un organismo estrictamente anaeróbico con
capacidad de reducción de hierro (Nevin y
Lovley, 2002) y nitrato (Jin et al., 2015). Cannavan
(2007) analizó la diversidad bacteriana en suelos de la región amazónica, y las
secuencias presentaron valores menores de 31 % de frecuencia en el género Geothrix.
Con
relación al género Anaeoromyxobacter,
se define como un microorganismo estrictamente anaeróbico y capaz de degradar
sustratos orgánicos (Sun et al., 2012). Estos microorganismos fueron observados en ambientes
con alta carga orgánica y tienen regularmente participación en las reacciones
de hidrólisis de compuestos orgánicos complejos (Hatamono, 2007; Pereyra, 2010). Ramos (2013) identificó este microorganismo,
específicamente una subespecie Anaeromyxobacter
spp., en la caracterización de aguas subterráneas
contaminadas con mezcla de diesel y biodiesel, con una frecuencia relativa de
aproximadamente 18 %. Igualmente, Silva et
al. (2007) identificaron el género Anaeoromyxobacter en muestras de manglar de una cuenca
petrolera (5 %).
En
un estudio realizado en ambientes contaminados con metales pesados, de igual
manera, el género Anaeoromyxobacter fue uno de los predominantes en el
riachuelo Los Macacos, con frecuencia relativa aproximada de 38 % (Xavier,
2019). El genoma completo de Anaeromyxobacter
sp. Fw109-5 (bacteria reductora de metal), fue
aislado de un medio contaminado, demostrando un gran potencial para procesos de
biorremediación (Hwang,
2015).
El género Gp1
pertenece al filo Acidobacteria y la clase Acidobacteria_Gp1, y fue
identificado por Etto (2011) en una comunidad de turfeiras (plantas pertenecientes a la familia Gentianaceae), y
también por Ferreira (2011) como el género preponderante en el ambiente
acuático donde se desarrolla una planta carnívora.
Del
total de los 267 géneros bacterianos identificados, el 15 % de estos microorganismos
fueron catalogados como "biorremediadores" de ambientes contaminados,
según lo relatado por varios autores (Mandri y
Lin, 2007; Jacques et al., 2007;
Alvarado, 2009; Seo et al., 2009; Nústez et
al., 2014; Xavier, 2019). Asimismo, estos microorganismos biorremediadores presentan
incremento en el número de secuencias finales, triplicando el valor en algunos
casos específicos; corroborando que cuando los hidrocarburos están presentes,
estas comunidades aumentan en 10 % de la comunidad total (Atlas y Cerniglia, 1995).
Curva
de rarefacción e índices de riqueza y diversidad
El agrupamiento de conjuntos de especies o géneros similares se denomina
unidad taxonómica operativa (OTU, según sus siglas en inglés), los cual es la base
para calcular las curvas de rarefacción, los índices de riqueza y diversidad de
los microorganismos existentes en ecosistema estudiado. En la Tabla 3, se
encuentran los datos de números de secuencias (inicial, final
y no clasificados), así como la distribución de OTU entre las diferentes
muestras.
Tabla 3. Distribución de OTU para las comunidades del
riachuelo con vertido continuo de efluentes de
hidrocarburos. Comunidad 1: antes del vertido, comunidad 2: después del
vertido.
Número de comunidad |
Código muestra |
N° secuencias inicial |
N° secuencias
final |
N° secuencias
no clasificadas |
N° OTU |
1 |
P1 |
15.762 |
10.000 |
6.682 |
2.578 |
P2 |
6.969 |
4.000 |
2.691 |
1.109 |
|
P3 |
18.652 |
13.000 |
4.163 |
1.980 |
|
P4 |
36.392 |
25.000 |
9.729 |
3.709 |
|
2 |
P5 |
28.664 |
22.000 |
3.758 |
1.778 |
P6 |
23.056 |
15.000 |
4.692 |
1.895 |
|
P7 |
27.311 |
21.000 |
6.153 |
2.626 |
|
P8 |
16.796 |
12.000 |
4.041 |
1.634 |
OTU: unidad taxonómica operativa.
La
comunidad 2 presentó la mayor cantidad de secuencias, tanto iniciales como
finales, seguida de la comunidad 1. Cabe destacar que el la comunidad 1 mostró la
mayor cantidad de secuencias de microorganismos no catalogados científicamente
(no clasificados), a pesar de presentar un menor número de secuencias, tanto
iniciales como finales. De la misma forma, el número de agrupamiento de géneros
(OTU) fue mayor para la comunidad 1, a pesar de presentar un menor número de
secuencias, seguido de la comunidad 2.
Curva de
rarefacción
Una
curva de rarefacción consiste en calcular el número esperado de especies (diversidad)
en cada muestra, para un tamaño de muestra patrón. Estas curvas permiten extrapolar la relación de OTU en
función del número de secuencias e indican el efecto del esfuerzo realizado en la secuenciación,
para estimar el valor máximo de OTU en un nivel filogenético. La obtención de una curva de este tipo permite la
comparación de muestras, aun con intensidades de muestras diferentes (Ferreira,
2011).
Los datos para la construcción de las curvas de
rarefacción de las comunidades de estudio en esta investigación, fueron los datos generados a partir del programa Mothur con 97 % de similaridad, considerando que dos secuencias pertenecen a
la misma OTU si presentan una distancia p menor al 3 %. En la Figura 5 puede visualizarse la curva de
rarefacción para las dos comunidades analizadas. Considerando el número de
secuencias para las dos comunidades, puede observarse que aunque se aumente el
número de estas, la tendencia de las curvas es hacia la estabilidad.
Figura 5. Curvas de rarefacción para las comunidades del
riachuelo con vertido continuo de efluentes de
hidrocarburos. OTU: unidad taxonómica operativa. Comunidad 1: antes del
vertido, comunidad 2: después del vertido.
Este
resultado indica que el número de secuencias realizadas en cada biblioteca, fue
relativamente suficiente para describir la diversidad presente en cada
comunidad analizada. Asimismo, puede visualizarse que la diversidad fue mayor
para comunidad 1, o sea la cantidad de OTU fue mayor con relación a la comunidad
2.
Índices de riqueza y diversidad
La
estimación de los diferentes índices de riqueza y diversidad bacteriana fue
realizada mediante aplicación del programa Mothur (Schloss, 2009), el cual considera los índices
específicos de Chao1 y Ace para estimar la riqueza y los índices de Shannon y
Simpson para la diversidad (97 % similitud). Los datos de los índices de
riqueza y diversidad, basados en las OTU, se encuentran en la Tabla 4.
Tabla 4. Índices de riqueza y diversidad (97 % similitud)
para las comunidades del riachuelo con vertido continuo de efluentes de
hidrocarburos. Comunidad 1: antes del vertido, comunidad 2: después del
vertido.
Número de comunidad |
Código muestra |
N° secuencias finales |
No. UTO |
Índices de riqueza |
Índices de diversidad |
||
Chao1 |
Ace |
Shannon |
Simpson |
||||
1 |
P1 |
10.000 |
2.578 |
6.169 |
9.829 |
6,62 |
0,005 |
P2 |
4.000 |
1.109 |
3.051 |
4.823 |
5,52 |
0,025 |
|
P3 |
13.000 |
1.980 |
4.353 |
6.636 |
5,67 |
0,016 |
|
P4 |
25.000 |
3.709 |
7.996 |
12.083 |
6,01 |
0,012 |
|
2 |
P5 |
22.000 |
1.778 |
4.390 |
7.991 |
3,02 |
0,363 |
P6 |
15.000 |
1.895 |
4.760 |
7.654 |
5,44 |
0,020 |
|
P7 |
21.000 |
2.626 |
5.975 |
9.407 |
5,20 |
0,057 |
|
P8 |
12.000 |
1.634 |
3.790 |
6.293 |
4,83 |
0,083 |
OTU: unidad taxonómica operativa.
El
índice de estimación de riqueza Chao1 es basado en la abundancia de OTU (únicas
y raras), para estimar la riqueza de una populación de tamaño desconocido (Schloss, 2009). Por otra parte, el índice de Ace, es un método no paramétrico para estimar el número de
especies existentes en una comunidad microbiana, y se define como la suma de
las probabilidades de las especies observadas. El método Ace divide las
frecuencias observadas en abundantes y grupos raros (Kim et al., 2017).
En
los resultados observados en la Tabla 4, específicamente con relación a los
índices de riqueza, Chao1 y Ace, algunos valores presentan disminución y otros
presentan incremento entre las muestras de la misma comunidad, así como entre
muestras de las dos comunidades analizadas. Para realizar un análisis de variación
porcentual de estos índices, se realizó la comparación de los resultados en los
diferentes puntos de colecta de las muestras (a 50 y 80 m aguas arriba y aguas
abajo después del vertido de efluentes, tanto en el centro y en la orilla del
riachuelo, respectivamente). En la Tabla 5 puede visualizarse el análisis
comparativo de la variación porcentual en los índices de riqueza.
Tabla 5. Análisis de variación porcentual de los índices
de riqueza para las comunidades del riachuelo con vertido continuo
de efluentes de hidrocarburos. Comunidad 1: antes del vertido, comunidad 2:
después del vertido.
Localidad |
Puntos de muestreo en el riachuelo |
Índice de riqueza Variación porcentual (%) |
|||||
Comunidad 1 |
Vs. |
Comunidad 2 |
Chao1 |
Ace |
|||
Centro de riachuelo a
50 m |
P1 |
…. |
P5 |
28,8 |
ê |
18,6 |
ê |
Orilla de riachuelo a
50 m |
P2 |
…. |
P6 |
56,0 |
é |
58,7 |
é |
Centro de riachuelo a 80
m |
P3 |
…. |
P7 |
37,2 |
é |
41,7 |
é |
Orilla de riachuelo a 80
m |
P4 |
…. |
P8 |
52,6 |
ê |
47,9 |
ê |
ê: disminución, é: incremento.
Al
comparar los resultados de la muestra P1 con la muestra P5 (Tabla 5), las
cuales están equidistantes a 50 m del punto de vertido de efluentes, en el
centro del riachuelo, pudo observarse la disminución del 28,8 % en el índice
Chao1 y una disminución del 18,6 % en el
índice Ace. Un comportamiento similar se obtiene al comparar los puntos de
muestreo P4 y P8. Sin embargo, entre los puntos P2 y P6, y entre P3 y P7, se
observó un incremento de 56,0 y 37,2 % en el índice Chao1 y de 58,7 y 41,7 % en
el índice Ace, respectivamente. Por lo tanto, en función de esta variación
porcentual (disminución e incremento) de los índices de Chao1 y Ace, no se
puede afirmar que la riqueza bacteriana sea mayor o menor en la comunidad 1 con
relación a la comunidad 2.
Por
otra parte, el índice de Shannon mide la diversidad y es utilizado en
situaciones en las que una comunidad entera no puede ser inventariada. Su
cálculo lleva en consideración que las especies presentan abundancias
diferentes (Rodrigues, 2011). En el resultado de esta
investigación (Tabla 4), este índice presentó una disminución en todos los
valores de la comunidad 2, con relación a la comunidad 1, indicando que la
comunidad 1 posee una mayor diversidad. Adicionalmente, el índice de Simpson
mide la dominancia dentro de una comunidad y la sensibilidad a los cambios en
las especies abundantes. Es útil para el monitoreo ambiental, el cual mide la
variación de las especies más abundantes por alguna perturbación. Los valores
de la diversidad, según índice Simpson, se encuentran dentro de una escala de 0
a 1; siendo mayor cuando se aproxima a uno, lo que indicará mayor dominancia y,
por consecuencia, menor diversidad (Ñique, 2010).
Los resultados de la diversidad, según el índice de Simpson (Tabla 4), fueron mayores
(más próximos a 1) en la comunidad 2, lo que indica la existencia de una mayor
dominancia de especies en la comunidad 2, pero con disminución en la diversidad.
Por lo tanto, la comunidad 1, presentó una diversidad mayor con relación a la
comunidad 2.
Análisis
estadístico
El
análisis AMOVA (generado por el programa Mothur) es una prueba estadística
análogo al ANOVA (análisis de varianza), y consiste en realizar el análisis
molecular de la varianza. Este método se usa
ampliamente en genética de poblaciones para probar la hipótesis de que la
diversidad genética dentro de dos poblaciones, no es significativamente
diferente de la que resultaría de la mezcla de ambas poblaciones (Neves, 2013). Los resultados del AMOVA generados por el programa
Mothur, se encuentran en la Tabla 6.
Tabla 6. Resultados del AMOVA (programa Mothur) para las
comunidades del riachuelo con vertido continuo de
efluentes de hidrocarburos. Comunidad 1: antes del vertido, comunidad 2:
después del vertido.
Variación |
AMOVA |
||
Comunidad 1
vs. Comunidad 2 |
Entre los grupos |
Dentro de los grupos |
Total |
SS |
127,569 |
138,502 |
26,607 |
df |
1 |
6 |
7 |
MS |
127,569 |
0,230836 |
|
Fs: |
552,637 |
||
pvalue: 0,023 |
|
|
|
SS:
suma de los cuadrados entre las dos comunidades; df: grados
de libertad; MS: cuadrado medio entre las dos comunidades; Fs:
valor de F para α=0,01; pvalue:
probabilidad.
Como puede observarse en la
comparación global entre las dos comunidades de estudio (Tabla 6), el resultado
refleja que no existe diferencia significativa entre ambas comunidades (pvalue: >0,001). Adicionalmente, el análisis de LIBSHUFF (Mothur) procura evaluar si las
muestras (bibliotecas) de cada una de las comunidades analizadas, poseen la misma
estructura genética (Schloss, 2009). Los resultados generados del análisis LIBSHUFF,
se presentan en la Tabla 7.
Los resultados muestran que no
existe diferencia significativa en la estructura genética entre las muestras de
cada una de las dos comunidades analizadas (p>0,008; valor de p calculado
después de la corrección de Bonferroni, p = significancia/número
de comparaciones, p = 0,1/12).
Tabla 7. Resultados del análisis LIBSHUFF (programa
Mothur) para las comunidades del riachuelo con vertido continuo
de efluentes de hidrocarburos. Comunidad 1: antes del vertido, comunidad 2:
después del vertido.
Comunidad 1 |
Comunidad 2 |
||
Comparación entre muestras (dCXYScore) |
Probabilidad P (significancia
10 %) |
Comparación entre muestras (dCXYScore) |
Probabilidad P (significancia
10 %) |
P1-P2 |
0,712 |
P5-P6 |
0,798 |
P2-P1 |
0,712 |
P6-P5 |
0,798 |
P1-P3 |
0,849 |
P5-P7 |
0,520 |
P3-P1 |
0,849 |
P7-P5 |
0,520 |
P1-P4 |
0,790 |
P5-P8 |
0,390 |
P4-P1 |
0,790 |
P8-P5 |
0,390 |
P2-P3 |
0,888 |
P6-P7 |
0,437 |
P3-P2 |
0,888 |
P7-P6 |
0,437 |
P2-P4 |
0,768 |
P6-P8 |
0,551 |
P4-P2 |
0,768 |
P8-P6 |
0,551 |
P3-P4 |
0,854 |
P7-P8 |
0,130 |
P4-P3 |
0,854 |
P8-P7 |
0,130 |
Conclusiones
En
la comunidad 1, el filo dominante fue Acidobacteria
con la clase Deltaproteobacteria, siendo los géneros Gp3 y Geobacter los preponderantes en esta comunidad de estudio. Con relación a la
comunidad 2, el filo Proteobacteria, la clase Betaproteobacteria y los géneros Geobacter y Gp3, fueron los predominantes.
Una
parte de los microorganismos resultaron “no clasificados” (no catalogados científicamente),
aproximadamente 31 % en comunidad 1 y 25 % en comunidad 2. Aproximadamente 15 %
de todos los géneros bacterianos identificados fueron catalogados como biorremediadores
de ambientes contaminados.
Los
índices de riqueza presentaron variación porcentual (disminución e incremento)
en ambas comunidades, lo cual no permite definir en cuál de las dos fue mayor
la riqueza. Con respecto al índice de diversidad, los resultados indican que la
diversidad bacteriana en el comunidad 1, fue más abundante con relación a la
comunidad 2. Sin embargo, estadísticamente se comprobó que no existe diferencia
significativa en la comparación global entre ambas comunidades (p>0,001).
Asimismo, los resultados mostraron la misma estructura genética entre las
muestras de cada comunidad analizada separadamente (p>0,008).
Los
resultados obtenidos representan un gran desafío para la exploración
biotecnológica y comprensión de la composición, riqueza y diversidad de la
comunidad bacteriana existente en este ecosistema, así como un gran potencial
para identificar y clasificar nuevos grupos taxonómicos.
Agradecimientos
Este trabajo fue posible
gracias al apoyo del programa multi-institucional de
post graduación en biotecnología (PPGBIOTEC) de la Universidad Federal del
Amazonas (UFAM), por el aporte de recursos humanos y económicos para realizar
todos los análisis respectivos. Igualmente se agradece a la Gerencia de
Seguridad, Medio Ambiente y Salud (SMS) de la empresa Petrobras-AM, por la
logística y apoyo para realizar las diversas visitas de campo para recolectar
muestras de estudio. Así mismo, se agradece a la Facultad de Tecnología,
Departamento de Ingeniería de Producción de la Universidad Federal del Amazonas
UFAM, por promover la publicación de este artículo.
Alvaredo, D. A. P. (2009).
Prospecção gênica e diversidade
bacteriana de um consórcio degradador de óleo diesel. Dissertação.
Faculdade de Ciências Agrárias e Veterinárias. Jaboticabal, SP. Brasil.
Amann, R. I., Ludwig, W., Schleifer, K. H. (1995). Phylogenetic
identification and in situ detection
of individual microbial cells without cultivation. Microbiology Review, 59, 143-169.
Atlas, R. M., Cerniglia, C. E. (1995). Bioremediation
of petroleum pollutants. Bioscience, 45, 332-338.
Bicudo, C. E. de M. (2004). Taxonomia. Biota Neotropica, 4(1), I-IIp.
Cannavan, F. S. (2007).
Diversidade das comunidades bacterianas
em solos de Terra Preta Antropogênica da Amazônia Central e Oriental Piracicaba.
Dissertação. Escola Superior de Agricultura “Luiz de Queiroz”. Universidade de
São Paulo, Piracicaba, SP. Brasil.
CONAMA. (2005). Capítulo III. Das condições e padrões de qualidade
das águas. Conselho Nacional do Meio Ambiente. Resolução No. 357, de 17 de
março de 2005. Publicada no DOU No 053, de 18/03/2005, Brasilia.
Etto, R. M. (2011). Comunidades procarióticas das turfeiras dos
campos de altitude paranaenses. Tese. Universidade Federal do Paraná,
Curitiba. Brasil.
Ferreira, A. J. (2011).
Diversidade e estrutura da comunidade
bacteriana associada às armadilhas da planta carnívora Utricularia gibba
(Lentibulariaceae) e o ambiente aquático. Dissertação. Instituto de
Ciências Biomédicas, Universidade de São Paulo. SP. Brasil.
Hatamono, M., Imachi H., Yashiro Y., Ohashi A., Harada H. (2007). Diversity of anaerobic microorganisms
involved in long-chain fatty acid degradation in methanogenic sludges as
revealed by RNA-based stable isotope probing. Applied and Environmental Microbiology, 73(13), 4119-4127.
Hwang, C., Copeland, A., Lucas, S., Lapidus,
A., Barry, K., Glavina Del Rio T., Dalin, E., Tice, H., Pitluck, S.,
Sims, D., Brettin, T., Bruce, D. C., Detter, J. C., Han, C. S., Schmutz,
J., Larimer, F. W., Land, M. L., Hauser, L. J., Kyrpides,
N., Lykidis, A., Richardson, P., Belieav,
A., Sanford, R. A., Löeffler, F. E., Fields, M. W. (2015). Complete genome sequence of Anaeromyxobacter sp. FW109-5, an
anaerobic, metal-reducing bacterium isolated from a contaminated subsurface. Environment. Genome Announcements, 3(1), e01449-14.
Jacques, R; Bento, F. M; Antoniolli,
Z. I., Camargo, F. A. (2007). Biorremediação de solos contaminados com hidrocarbonetos
aromáticos policíclicos. Ciência rural, 37(4), 1192-1201.
Jin J., Wu G., Guan Y. (2015). Effect of
bacterial communities on the formation of cast iron corrosion tubercles in
reclaimed water. Water Res., 71, 207-218.
Kielak, A., Pijl, A., Van-Veen,
J., Kowalchuk, G.
(2008). Differences
in vegetation composition and plant species identity lead to only minor changes
in soil-borne microbial communities in a former arable field. FEMS. Microbiology Ecology, 63(3), 372-382.
Kim, B. R., Jiwon, S., Guevarra, R, Lee,
J., Kim, D., Seol, K-H., Lee, J. H, Kim, H. B. Isaacson, R. (2017). Deciphering
diversity indices for a better understanding of microbial communities. Microbiol. Biotechnol., 27(12), 2089-2093.
Kleinsteuber, S., Schleinitz K. M.,
Vogt C. (2012). Key players and team play: anaerobic
microbial communities in hydrocarbon- contaminated aquifers. Applied Microbiology and Biotechnology,
94(4), 851-873.
Mandri, T., Lin, J. (2007). Isolation and
characterization of en Kwazulu-Natal, South Africa. African
Journal of Biotechnology, 6(1), 023-027.
Neves, R. O. (2013).
Caracterização da microbiota bacteriana
da água do Rio Negro em diferentes períodos sazonais. Dissertação.
Universidade Federal do Amazonas UFAM, AM, Brasil.
Nevin, K., Lovley,
D. R. (2002). Mechanisms for accessing
insoluble Fe(III) oxide during dissimilatory Fe(III) reduction by Geothrix fermentans. Applied and Environmental Microbiology, 68(5), 2294-2299.
Ñique, M. (2010). Biodiversidad: Clasificación y
cuantificación. Universidad Nacional Agrária de la Selva. Tingo María, Perú.
Nishimura, Y., Nagata, T. (2007).
Alphaproteobacterial dominance in a large mesotrophic lake (Lake Biwa, Japan). Aquatic Microbial Ecology, 48, 231-240.
Nústez C., Paredes D., Cubillos.
J. (2014). Biorremediación para la degradación de hidrocarburos totales
presentes en los sedimentos de una estación de servicio de combustible. Rev.
Téc. Ing. Univ. Zulia, 37(1),
20-28.
Parmar S., Sharma,
V. K., Kumar, J. (2019). Aplication of molecular and sequencing techniques in analysis of microbial
diversity in agroecosystem. In: Microbial Genomics in Sustainable Agroecosystems,
Ed. Tripathi, V., Kumar, P., Tripathi,
P., Kishore, A., Kamle. M. Singapore: Springer.
Peixoto, J. C.,
Leomil L., Souza J. V., Peixoto F.B. S., Astolfi-Filho S. (2011). Comparison of bacterial communities in the
Solimões and Negro River tributaries of the Amazon River based on small subunit
rRNA gene sequences. Genetics and
Molecular Research, 10(4), 3783-3793.
Pereyra, L. P., Hiibel,
S. R., Prieto M. V., Reardon, K. F., Pruden, A.
(2010). Detection and quantification of functional genes of cellulose
degrading, fermentative, and sulfate-reducing Bacteria and methanogenic Archaea.
Applied and Environmental Microbiology, 76(7), 2192-2202.
Ramos, D. T.
(2013). Bioestimulação de processos
metanogênicos com acetato de amônio para degradação acelerada de
hidrocarbonetos de petróleo em águas subterrâneas contaminadas com diesel B20.
Tese. Universidade Federal de Santa Catarina. Florianópolis, SC. Brasil.
Rodrigues, T. B. (2011).
Diversidade metagênomica microbiana de biomas terrestres e marinhos. Tese.
Universidade Federal de Rio de Janeiro, RJ. Brasil.
Schloss, P. D.
(2009). A high-throughput DNA
sequence aligner for microbial ecology studies. PLoS ONE, 4, 8230.
Seo, J. S., Keum
Y. S., Li, Q. X. (2009).
Bacterial degradation of aromatic compounds. International Journal of Environmental Research, and Public Health,
6, 278-309.
Silva,
C. L. V., Silva A. L. S, De Medeiros, S. R. B., Lima L. F., Blaha
C. A. G. (2007). Detecção de
bacterias redutoras de Fe (III), em mangue da bacia petrolífera Portiguar com
potencial biodegradador de petróleo. 4° PDPETRO. Campinas, SP. Brasil.
Sun, W., Sun X., Cuples A. M. (2012).
Anaerobic methyl tert-butyl ether-degrading microorganisms identified in
wastewater treatment plant samples by stable isotope probing. Applied and Environmental Microbiology,
78(8), 2973-2980.
Torsvik, V., Salte K., Sorheim, R., Goksoyr,
J. (1990). Comparison of phenotypic diversity and DNA heterogeneity in a
population of soil bacteria. Appl. Environ.
Microbiol., 56(3), 776-781.
Toyama, D. (2012). Análise
da diversidade microbiana aquática em rios e lagos da região amazônica. Dissertação.
Universidade de São Paulo, SP. Brasil.
Xavier, J. C.,
Costa, P. E. S., Hissa, D. C, Melo, V. M. M, Lima, M. G. S., Coutinho, H.,
Verde, L. C. L (2019). Evaluation
of the microbial diversity and heavy metal resistance genes of a microbial
community on contaminated environment. Applied
Geochemistry, 105, 1-6.
Zwart, G., Zwart, G., Crump, B. C., Agterveld,
M. P. K. V., Hagen, F., Han, S. K. (2002). Typical freshwater bacteria: an
analysis of available 16S rRNA gene sequences from plankton of lakes and rivers.
Aquatic Microbiol. Ecol., 28,
141-155.