Fenotipo de resistencia a MLSB y tipificación estructural del cassette cromosomal mec (SCCmec) en Staphylococcus aureus resistentes a meticilina procedentes de manos de manipuladores de alimentos

  • Víctor Pico-Bracho Universidad del Zulia, Maracaibo, Venezuela.
  • Jhoandry Rivera-Salazar Universidad del Zulia, Maracaibo, Venezuela.
  • Velina Aranaga-Natera Universidad del Zulia, Maracaibo, Venezuela.
  • Isabel Mujica de Fernández Universidad del Zulia, Maracaibo, Venezuela.
  • Yolaimis La Paz-Delgado Universidad del Zulia, Maracaibo, Venezuela.
  • Irene Zabala-Díaz Universidad del Zulia, Maracaibo, Venezuela.
Palabras clave: Staphylococcus aureus, manipuladores de alimentos, resistencias a los antibióticos

Resumen

Las múltiples resistencias a los antimicrobianos han hecho que Staphylococcus aureus sirva de reservorios de las mismas y ser el medio ideal para transferirlas. Esta investigación se ha centrado en la identificación de cepas de S. aureus resistentes a la meticilina en las manos de manipuladores de alimentos (N= 103) de una planta de procesadora de cangrejos para evaluar en ellos la resistencia al grupo de antibióticos de Macrólidos, Lincosamidas y Estreptogramina B y el tipo estructural del SCCmec que portan. Las determinaciones de resistencia se evidenciaron mediante métodos recomendados por el CLSI como: antibiogramas, crecimiento en agar Müller-Hinton hipersalino suplementado con oxacilina y expresión de la proteína PBP2a mediante aglutinación de micropartículas de látex sensibilizadas contra esta proteína. Los resultados mostraron la persistencia en las manos de cepas de S. aureus resistentes a la meticilina que también poseen fenotipos de resistencia al grupo de antibióticos MLSB, incluso tras el lavado rutinario de las manos de los manipuladores. Todas las cepas de SARM expresaron la proteína PBP2a y demostraron ser heterorresistentes con concentraciones mínimas inhibitorias que oscilaban entre 32-128 ug/mL de oxacilina; entre los aislados de SARM se encontraron cepas pertenecientes al grupo de halotipos SCCmec IV y I. Los resultados ponen de manifiesto la atención que debe prestarse a la forma en que las cepas de S. aureus resistentes a los antibióticos pueden propagarse fuera del ámbito de los entornos nosocomiales y la necesidad de un seguimiento constante de las buenas prácticas de fabricación dentro de las plantas de procesamiento de alimentos.

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Biografía del autor/a

Víctor Pico-Bracho, Universidad del Zulia, Maracaibo, Venezuela.

La Universidad del Zulia. Facultad Experimental de Ciencias. Departamento de Biología. Laboratorio de Genética Biología Molecular. Código postal: 4011, Maracaibo- estado Zulia, Venezuela.

Jhoandry Rivera-Salazar, Universidad del Zulia, Maracaibo, Venezuela.

Universidad del Zulia. Facultad Experimental de Ciencias. Departamento de Biología. Laboratorio de Genética Biología Molecular. Código postal: 4011, Maracaibo- estado Zulia, Venezuela.

Velina Aranaga-Natera, Universidad del Zulia, Maracaibo, Venezuela.

Universidad del Zulia. Facultad Experimental de Ciencias. Departamento de Biología. Laboratorio de Genética Biología Molecular. Código postal: 4011, Maracaibo- estado Zulia, Venezuela.

Isabel Mujica de Fernández, Universidad del Zulia, Maracaibo, Venezuela.

Universidad del Zulia. Facultad Experimental de Ciencias. Departamento de Biología. Laboratorio de Genética Biología Molecular. Código postal: 4011, Maracaibo- estado Zulia, Venezuela.

Yolaimis La Paz-Delgado, Universidad del Zulia, Maracaibo, Venezuela.

Universidad del Zulia. Facultad Experimental de Ciencias. Departamento de Biología. Laboratorio de Genética Biología Molecular. Código postal: 4011, Maracaibo- estado Zulia, Venezuela.

Irene Zabala-Díaz, Universidad del Zulia, Maracaibo, Venezuela.

Universidad del Zulia. Facultad Experimental de Ciencias. Departamento de Biología. Laboratorio de Genética Biología Molecular. Código postal: 4011, Maracaibo- estado Zulia, Venezuela.

Citas

ACUÑA, S. DEL V., E. SÁNCHEZ y L. ABADÍA-PATIÑO. (2014). Tipificación de la "Antonio Patricio de Alcalá", Cumaná, estado Sucre, Venezuela. Rev. Soc. Ven. Microbiol. 34(1):4 -9.

AKTAS, Z., A. ARIDOGAN, C. B. KAYACAN y D. AYDIN. (2007). Resistance to macrolide, lincosamide and streptogramin antibiotics in staphylococci isolated in Istanbul, Turkey. J. Microbiol. 45(4): 286-290.

ARANAGA, V., J. RIVERA, I. MUJICA, C. NAVARRO, I. ZABALA y L. ATENCIO. (2010). Producción de β-lactamasas y plásmidos presentes en cepas de Staphylococcus aureus aisladas de portadores nasales sanos: Estudio preliminar. Bol. Centro Inv. Biol. 44(4): 461-476.

BAIG, S., T. B. JOHANNESEN, S. OVERBALLE-PETERSEN, J. LARSEN, A. R. LARSEN y M. STEGGER. (2018). Nuevo SCCmec tipo XIII (9A) identificado en un Staphylococcus aureus resistente a la meticilina ST152. Infect. Genet. Evol. 61:74- 76.https://doi.org/10.1016/j.meegid.2018.03.013.

BASTIDAS, B., M. MÉNDEZ, Y. VÁZQUEZ y D. REQUENA. (2020). Tipificación del cassette cromosómico estafilocócico de Staphylococcus aureus resistentes al meticilino en el estado de Aragua, Venezuela. Rev. Perú. Med. Exp. Salud pública. 37(2): 239- 245. Doi: http://dx.doi.org/10.17843/rpmesp.2020.372.4652.

CÁRDENAS, M. (2012). Detección de Staphylococcus aureus oxacilino resistente en manipuladores de alimentos del área de cocina del Hospital Universitario "Antonio Patricio De Alcalá", Cumaná, Estado Sucre. (Tesis doctoral). Universidad de Oriente Núcleo de Sucre, Venezuela.

CASTELLANO-GONZÁLEZ, M. J., A. J. PEROZO-MENA, R. L. VIVAS-VEGA, M. M. GINESTRE-PÉREZ y G. C. RINCÓN-VILLALOBOS. (2009). Tipificación molecular y fenotípica de Staphylococcus aureus resistentes a meticilina (SAMR) en un hospital universitario. Rev. Chil. Infect. 26(1): 39-48.

CENTERS FOR DISEASE CONTROL AND PREVENTION. (2023). Staphylococcal (Staph) food poisoning. Disponible en: https://www.cdc.gov/fooddsafety/diseases/staphylococcal.html.

CERVANTES-GARCÍA, E., R. GARCÍA-GONZÁLEZ y P. M. SALAZAR-SCHETTINO. (2014). Importancia de Staphylococcus aureus meticilina resistente intrahospitalario y adquirido en la comunidad. Rev. Latin. Patol. Clín. Med. Lab. 61(4): 196-204.

CERVANTES-GARCÍA, E., R. GARCÍA-GONZÁLEZ y P. M. SCHETTINO. (2015). Staphylococcus aureus asociado a la comunidad (CA-MRSA). Rev. Latin. Patol. Clín. Med. Lab. 62(2): 100-111.

CHON, J., K. SUNG y S. KHAN. (2017). Methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA) in food-producing and companion animal and food products. Frontiers Staphylococcus aureus. 8: 47-102.https://doi.org/10.5772/66645.

CHUNG, M., A. ANTIGNAC, C. KIM y A. TOMASZ. (2008). Comparative study of the susceptibilities of major epidemic clones of methicillin-resistant Staphylococcus aureus to oxacillin and to the new broad-spectrum cephalosporin ceftobiprole. Antimicrob. Agents Chemoth. 52(8), 2709-2717. https://doi.org/10.1128/AAC.00266-
08.

DE LEO, F. R., M. OTTO, B. N. KREISWIRTH y H. F. CHAMBERS. (2010). Staphylococcus aureus resistente a la meticilina asociado a la comunidad. The Lancet. 375(9725): 1557-1568. https://doi.org/10.1016/S0140-6736(09)61999-1.

DEURENBERG, R. H., C. VINK, S. KALENIC, A. W. FRIEDRICH, C. A. BRUGGEMAN y E. E. STOBBERINGH. (2007). The molecular evolution of methicillin-resistant Staphylococcus aureus. Clin. Microbiol. Infect. 13(3):222-235. https://doi.org/ 10.1111/j.1469-0691.2006.01573.x.

HANSSEN, A. M. y J. U. ERICSON. (2006). SCCmec en estafilococos: genes en movimiento. Fems Inmunol. And Med. Microbiol. 46(1): 8-20. https://doi.org/10.1111/ j.1574-695X.2005.00009.x.

INSTITUTO DE NORMAS CLÍNICAS y DE LABORATORIO (Editor). (2018). Normas de desempeño para pruebas de susceptibilidad antimicrobiana: Vigésimo primer suplemento informativo M100-S21. Wayne, PA, USA.

KALE, P. y B. DHAWAN. (2016). La cara cambiante del Staphylococcus aureus resistente a la meticilina adquirido en la comunidad. Indian J. Med. Microbiol. 34(3): 275-285. https://doi.org/10.4103/0255-0857.188313.

KUEHNERT, M. J., D. KRUSZON-MORAN, H. A. HILL, G. MCQUILLAN, S. K. MCALLISTER, G. FOSHEIM, L. MCDUGAL, J. CHAITRAM, B. JENSEN, S. FRIDKIN, G. KILLGORE y F. TENOVER. (2006). Prevalencia de la colonización nasal por Staphylococcus aureus en Estados Unidos, 2001-2002. J. Infect. Dis. 193(2): 172-179. https://doi.org/10.1086/499632.

LIU, J., D. CHEN, B. M. PETERS, L. LI, B. LI, Z. XU y M. E. SHIRLIFF. (2016). Staphylococcal chromosomal cassettes mec (SCCmec): un elemento genético móvil en Staphylococcus aureus resistente a la meticilina. Microb. Path.101: 56-67. https://doi.org/10.1016/j.micpath.2016.10.028.

LORIAN, V. 2005. Antibióticos en medicina de laboratorio. 5th ed. Philadelphia: Lippincott Williams y Wilkins.

MACFADDIN, J. F. (2000). Prueba bioquímica para la identificación de bacterias médicas. 3rd Ed. Philadephia: Lippincott Williams y Wilkins.

MOISAN, H., M. PRUNEAU y F. MALOUIN. (2010). Binding of ceftaroline to penicillin-binding proteins of Staphylococcus aureus and Streptococcus pneumoniae. J. Antimicrob. Chemoth. 65(4):713-716. https://doi.org/10.1093/jac/dkp503.

MONECKE, S., P. SLICKERS, M. J. ELLINGTON, A. M. KEARNS y R. EHRICHT. (2007). High diversity of Panton-Valentine leukocidin-positive, methicillin-susceptible isolates of Staphylococcus aureus and implications for the evolution of community- associated methicillin-resistant S. aureus. Clinic. Microb. And Infect. 13(12):1157- 1164. https://doi.org/10.1111/j.1469-0691.2007.01833.x.

NORIEGA, L. M., P. GONZÁLEZ, J. C. HORMAZÁBAL, C. PINTO, M. CANALS, J. M. MUNITA, L. THOMPSON, A. MARCOTTI, J. PÉREZ, D. IBÁÑEZ, P. ARAYA, C. CANALS y P. VIAL. (2008). Staphylococcus aureus comunitario resistente a cloxacilina: Comunicación de los primeros cinco casos descritos en Chile. Rev. Méd. Chil. 136(7): 885-891. http://dx.doi.org/10.4067/S0034-98872008000700010.

OKUMA, K., K. IWAKAWA, J. D. TURNIDGE, W. B. GRUBB, J. M. BELL, F. G. O'BRIEN, G. COMBS, J. PEARMAN, F. TENEOVER, M. KAPI, C. TIENSASITORN, T. ITO y K. HIRAMATSU. (2002). Diseminación de nuevos clones de Staphylococcus aureus resistentes a la meticilina en la comunidad. J. Clin. Microb. 40(11): 4289-4294. https://doi.org/10.1128/JCM.40.11.4289-4294.2002.

OLIVEI A, D. C. y H. DE LENCASTRE. (2002). Multiplex PCR strategy for rapid identification of structural types and variants of the mec element in methicillin- resistant Staphylococcus aureus. Antimicrob. Agents and Chemoth. 46(7). http://dx.doi.org/2155-2161. 10.1128/AAC.46.7.2155-2161.2002.

PARDO, L., V. MACHADO, D. CUELLO, P. AGUERREBERE, V. SEIJA, V. BRAGA y G. VARELA. (2020). Macrolide- Linconsamide- Streptogramine B resistance phenotypes and their associated phenotypes in Staphylococcus aureus isolates from a tertiary level hospital of Uruguay. Rev. Arg. Microbiol. 52(3): 202-210. https://doi.org/10.1016/j.ram.2019.10.004

REYES, J., S. RINCÓN, L. DÍAZ, D. PANESSO, G. CONTRERAS, J. ZURITA, C. CARRILLO, A. RIZZI, M. GUZMÁN, J. ADACHI, S. CHOWDHURY, B. MURRAY y C. ARIAS. (2009). Diseminación del linaje de Staphylococcus aureus resistente a la meticilina secuencia USA300 tipo 8 en América Latina. Clin. Infect. Diss. 49(12): 1861- 1877. https://doi.org/10.1086/648426.

RIVERA-SALAZAR, J., I. MUJICA DE FERNÁNDEZ, V. ARANAGA-NATERA, C. NAVARRO-OCANDO, I. ZABALA-DÍAZ y L. ATENCIO-BRACHO. (2011). Staphylococcusaureus procedentes de quesos: susceptibilidad a antibióticos y su relación con plásmidos. Rev. Cient. 21(3): 202-210.

RIVERA-SALAZAR, J., V. PICO-BRACHO, I. MUJICA DE FERNÁNDEZ, V. ARANAGA-NATERA, Y. LA PAZ-DELGADO y I. ZABALA-DÍAZ. (2023). Producción de exopolisacárido y propiedades de la superficie celular en Staphylococcus aureus relacionados con alimentos. Rev. Soc. Ven. Microbiol. 43(2): 231-239. Disponible en http://saber.ucv.ve/ojs/index.php/rev_vm.

SÁNCHEZ, M., O. HERNÁNDEZ, L. VELÁSQUEZ, D. RIVAS, A. MARÍN, L. GONZÁLEZ, C. DUQUEA y C. DUQUE. (2013). Caracterización del gen mecA de Staphylococcus aureus resistentes a meticilina aislados de tres grupos poblacionales de la ciudad de Medellín. Infectio. 17: 66-72. https://doi.org/10.1016/S0123- 9392(13)70165-6.

TONG, S. Y., J. S. DAVIS, E. EICHENBERGER, T. L. HOLLAND y V. G. FOWLER. (2015). Infecciones por Staphylococcus aureus: epidemiología, fisiopatología, manifestaciones clínicas y manejo. Clin. Microbiol. Reviews. 28(3): 603-661.

TORRES, C. y E. CERCENADO. (2010). Lectura interpretada del antibiograma de cocos gram positivos. Enferm. Infec. y Microb. Clín. 28(8):541-553. https://doi.org/10.1016/j.eimc.2010.02.003.

TORRES SEGARRA, S. M. y K. E. PACHECO CÁRDENAS. (2021). Staphylococcus aureus resistentes a meticilina en alimentos. Revista Vive. 4(12): 457–469. https://doi.org/10.33996/revistavive.v4i12.106

VALDIVIEZO, N., B. VILLALOBOS y R. MARTÍNEZ. (2006). Evaluación microbiológica en manipuladores de alimentos de tres comedores públicos en Cumana-Venezuela. Rev. Soc. Ven. Microb. 26(2): 95-100.

VALERO-LEAL, K., J. RIVERA-SALAZAR, E. VALBUENA, L. BOSCÁN, R. VALERIS, G. CASTRO y W. BRIÑEZ. (2012). Caracterización bioquímica y producción de enterotoxinas de cepas de Staphylococcus aureus aisladas de leche cruda y queso fresco artesanal en fincas del estado Zulia. Rev. Cient. 22(4): 303 - 314.
Publicado
2024-08-09
Cómo citar
Pico-Bracho, V., Rivera-Salazar, J., Aranaga-Natera, V., Mujica de Fernández, I., La Paz-Delgado, Y., & Zabala-Díaz, I. (2024). Fenotipo de resistencia a MLSB y tipificación estructural del cassette cromosomal mec (SCCmec) en Staphylococcus aureus resistentes a meticilina procedentes de manos de manipuladores de alimentos. Boletín Del Centro De Investigaciones Biológicas, 58(1), 1-19. https://doi.org/10.5281/zenodo.13287978