Flavonoids in fruits of Criolla Roja guava (Psidium guajava L.).

  • Evelyn Pérez-Pérez Universidad del Zulia
  • Marilenys Margarita Saavedra-Guillén Universidad del Zulia
  • José Gerardo Ortega Fernández Universidad del Zulia
  • Luis Enrique Sandoval-Sánchez Universidad del Zulia
  • Deisy Medina-Lozano Universidad del Zulia
  • Maribel Ramírez Villalobos Universidad del Zulia
  • Gretty Ettiene-Rojas Universidad del Zulia
Keywords: Phytochemical;, myricetin;, apigenin;, quercetin;, kaempferol;, HPLC;, antioxidants.

Abstract

The flavonoids are a large family of plants secundary metabolites, are well known for their human health benefits such as antioxidant activity, anti-inflammatory, anti-thrombotic, anticarcinogenic, antibacterial, antifungic, and other beneficial. Because of this wide range of properties is considered necesary determine the flavonoids present in guava fruits as potential source of phytochemicals. In order to determine the con-tent of flavonoids in fruits of Criolla Roja guava (Psidium guajava L.), 20 individuals were selected from the same population of the collection of promising cups guavas of the germplasm bank of the CESID-Frutícola y Apícola-CORPOZULIA. The fruit samples (0.25 g) were subjected to acid hydrolysis and the separation of the flavonols (myricetin, quercetin, and kaempferol) and the flavones (apigenin), was performed by HPLC in reverse phase. Significant statistical differences (P˂0.05) were observed in flavonoid content by plant effect. The highest apigenin content was found in the fruits of the plant L-12 (10.77 mg·100 g-1 sample), while the lowest was detected in the fruits of the L-4 (2.50 mg·100 g-1 sample). The highest contents of myricetin (386.72 mg·100 g-1 sample) and quercetin (9.47 mg·100 g-1 sample), on the other hand, was found in fruits of H-13, while kaempferol predominates in fruit of G-13 (18.47 mg·100 g-1 sample). There is a variable concentration of flavonoids in the fruits of P. guajava, Criolla roja variety, thus demonstrating that it constitutes a potential natural source for human consumption and for the food industry.

Downloads

Download data is not yet available.

References

ALFARO, S., A. MUTIS, R. PALMA, A. QUIROZ, I. SEGUEL y E. SChEUERMANN. 2013. Influence of genotype and harvest year on polyphenol content and antioxidant activity in murtilla (Ugni molinae Turcz) fruit. J. Soil Sci Plant Nutr. 13(1): 67-78.

AVELLO, M., E. PASTENE, E. BUSTOS, M. MITTNER y J. BECERRA. 2013. Variation inphenolic compounds of Ugni molinae populations and their potential use as antioxidant supplement. Braz J. Pharmacog . 23(1): 44-50.

BOLLING, B., G. DOLNIkOwSkI, J. BLUMBERG y C. ChEN. 2010. Polyphenol content and antioxidant activity of California almonds depend on cultivar and harvest year. Food Chem. 122 (3): 819-825.

ChEN, C., J. ZhOU y C. JI. 2010. Quercetin: a potential drug to reverse multidrugresistance. Life Sci. 87: 333-338.

ChERNIACk, E. 2010. The potential influence of plant polyphenols on the aging pro- cess. Forschende Komplementarmedizin. Complementary med res. 17: 181-187.

CONTRERAS, J., L. CALDERON, E. GUERRA y B. GARCÍA. 2010. Antioxidant capacity, phenolic content and vitamin C in pulp, peel and seed from 24 exotic fruits from Colombia. Food Res Int. 44 (7): 2047-2053.

COPLANARAh. 1975. Inventario Nacional de Tierras. Región Lago de Maracaibo, Atlas, MAC-CENIAP, Caracas, Venezuela, 42 p.

DAZA, L., A. hERRERA, E. MURILLO y J. MENDEZ. 2014. Evaluación de propiedades antioxidantes de parte comestible y no comestible de pitahaya, uchuva y mangostino. REV bio agro. 12 (1): 98-105.

DINELLI, G., A. BONETTI, M. MINELLI, I. MAROTTI, P. CATIZONE y A. MAZZANTI. 2006. Content of flavonols in Italian bean (Phaseolus vulgaris L.) ecotypes. Food Chem. 90: 105-114.

EwEL, J. y A. MADRIZ. 1968. Zonas de vidas de Venezuela. Memoria explicativa sobre el Mapa Ecológico, Edit. Sucre, M.A.C, Dirección de Investigación. 264 p.

HAEJIN, BAE, G. k. JAyAPRAkASkA, J. JIfON y P. BhIMANAGOUDA. 2012. Extraction efficiency and validation of an HPLC method for flavonoid analysis in pepper. Food Chem. 130: 751-758.

hAyTOwITZ, D., S. BhAGwAT y J. hOLDEN. 2013. Sources of variability in the flavonoid content of foods. Procedia Food Sci. 2: 46-51.

HERNáNDEZ, D., O. GARCÍA, J. ROSADO y I. GOÑI. 2011. The Contribution of Fruits and Vegetables to Dietary Intake of Polyphenols and Antioxidant Capacity in a Mexi- can Rural Diet: Importance of Fruit and Vegelable Variety. Food Res Int. 44: 1182- 1189.

JOhNSON, J., J. BOMSER, J. SChEERENS y M. GIUSTI. 2011. Effect of black raspberry (Rubus occidentalis L.) extract variation conditioned by cultivar, production site, and fruit maturity stage on colon cancer cell proliferation. J. Agric Food Chem. 59: 1638- 1645.

JONES, C. y S. hARTLEy. 1999. A protein competition model of phenolic allocation. Oikos. 86: 27-44.

kORkINA, L. y I. AfANAS’EV. 1997. Antioxidant and chelating properties of flavonoi- ds. Adv Pharmacol. 38: 151-163.

LIU, X., X. y AN, J. BI, J. LIU, M. ZhOU, X. wU y Q. ChEN. 2018. Determination of Phenolic Compounds and Antioxidant Activities from Peel, Flesh, Seed of Guava (Psidium guajava L.). Electrophoresis. 1-32. doi:10.1002/elps.201700479.

MARQUINA, V., L. ARAUJO, J. RUIZ, A. RODRÍGUEZ y P. VIT. 2008. Composición química y capacidad antioxidante en fruta, pulpa y mermelada de guayaba (Psidium guajava L.). Arch Latinoam Nutr. 58 (1): 98-102.

MORENO, C. y C. PLAZAS. 2005. Validación de una metodología analítica para la Cuantificación por HPLC de Quercetina en una Matriz Vegetal. REV Colomb Cien Quím farm. 34(1): 58-68.

OChOA, C. y A. AyALA. 2004. Flavonoides: Apuntes Generales y su Aplicación en la Industria de Alimentos. Ingeniería de los Alimentos. Universidad del Valle, Colombia. ING Compet. 6 (2): 93-104.

ORDOñEZ, E., A. LEóN, D. REáTEGUI y M. SANDOVAL. 2012. Cuantificación de polifenoles totales y actividad antioxidante en hojas, corteza y fruto de dos variedades de guayaba (Psidium guajava L.). Investig y Amazon. 1(2): 48-52. Obtenido de http:// www.academia.edu/download/32119318/antioxidantes_en_hojas_de_guayaba .pdf

PALOMINO, M., E. GUIJA y N. LOZANO. 2009. Propiedades antioxidantes de la guayaba (Psidium guajava L.). Rev Soc Quim Perú. 75(2): 227-234.

PéREZ, R., S. MITChELL S. y R. VARGAS. 2008. Psidium guajava: A review of its traditional uses, phytochemistry and pharmacology. J. Ethnopharmacol. 117: 1-27.

PéREZ-PéREZ, E., G. ETTIENE, M. MARÍN, A. CASASSA-PADRóN, N. SILVA, J. RAGA, C. GONZáLEZ, L. SANDOVAL y D. MEDINA. 2014. Determinación de fenoles y flavonoides totales en hojas de guayabo (Psidium guajava L.). Rev Fac Agron (LUZ). 31: 60-77.

RIVERO-MALDONADO G., D. PAChECO, L. MARTÍN, A. SáNChEZ, M. QUIRóS, J. ORTEGA, C. COLMENARES y B. BRAChO. 2013. Flavonoides presentes en especies de Psidium (Myrtaceae) de Venezuela. Rev Fac Agron (LUZ). 30: 217-241.

SAN-GwANG, h., L. yI-yING y L. hUEy-LIN. 2017. Excellent nutritional value in fruits of three guava cultivars in Taiwan. Acta Hortic. 1166: 209-213. doi:10.17660/ ActaHortic.2017.1166.30

STATISTICAL ANALySIS SOfTwARE (SAS) INSTITUTE, INC. 2000-2003. SAS User´s Guide: Statistic. SAS Version 9.0. Institute, Inc., Cary, NC, USA.

VALARES, C. 2011. Variación del metabolismo secundario en plantas debida al genotipo y al ambiente. Trabajo de grado, Universidad Extremadura, Departamento de Biología vegetal, Ecología y Ciencias de la tierra, 216 p.

VALENZUELA, P. 2015. Evaluación de la actividad antioxidante y determinación del contenido de fenoles totales y flavonoides de hojas de diferentes genotipos de Ugni molinae Turcz. Trabajo de grado, Universidad de Chile, Departamento de Bio- química y Biología Molecular, 83 p.

VARGAS, D., M. SOTO, V. GONZáLEZ, E. ENGLEMAN y A. MARTÍNEZ. 2005. Variación del contenido de flavonoides en hojas de guayaba en condiciones de estrés. REV Chapingo Ser hortic. 11(1): 89-92.

VARGAS, D., M. SOTO, V. GONZáLEZ, E. ENGLEMAN y A. MARTÍNEZ. 2006. Cinéticade acumulación y distribución de flavonoides en guayaba (Psidium guajava L.). Agrociencia. 40(1): 109-115.

VEGA, D. y D. RODRÍGUEZ. 2008. Estudio de los posibles flavonoides del jugo de la parchita amarilla (Passiflora edulis var. flavicara), AsoVAC LVIII Convención Anual San Felipe, Yaracuy.

YANG, G., P. LIU, X. QU, M. XU, Q. QU, C. wANG, X. hU y Z. wANG. 2007. The simultaneous separation and determination of six flavonoids and troxerutin in rat urine and chicken plasma by reversed phase high performance liquid chromatography withultraviolet-visible detection. J. Chromatogr B. 856 (1-2): 222-228.

Published
2021-01-25
How to Cite
Pérez-Pérez, E., Saavedra-Guillén, M. M., Ortega Fernández, J. G., Sandoval-Sánchez, L. E., Medina-Lozano, D., Ramírez Villalobos, M., & Ettiene-Rojas, G. (2021). Flavonoids in fruits of Criolla Roja guava (Psidium guajava L.) . Boletín Del Centro De Investigaciones Biológicas, 53(3), 236-249. Retrieved from https://mail.produccioncientificaluz.org/index.php/boletin/article/view/34916